СибНСХБ

Вид поиска

Область поиска

в найденном

Найдено в других БД

Формат представления найденных документов:
библиографическое описание	краткий	полный

Отсортировать найденные документы по:
автору	заглавию	году издания	типу документа

Поисковый запрос: (<.>S=DNAA<.>)

Общее количество найденных документов : 150
Показаны документы с 1 по 20

1-20 21-40 41-60 61-80 81-100 101-120

РЖ ВИНИТИ 34 (BI12) 90.05-04Б2.93

Yasuda, Seiichi.
Purification and characterization of the dnaA protein of Escherichia coli [Text] / Seiichi Yasuda ; Nat. Inst. Genet. // Annu. Rept. - 1987(1988). - N 38. - P53-55 . - ISSN 0077-4995
Перевод заглавия: Очистка и характеристика белка dnaA из Escherichia coli
Аннотация: Белок dnaА частично очищен и охарактеризован с целью выяснения его функций. Кл-сверхпродуценты dnaA, содержащие плазмиду, подвергались лизису по стандартной методике с лизоцимом, затем остатки Кл удалялись центрифугированием, а бесклеточный экстракт фракционировался сульфатом аммония, затем - КХ на КМ-сефадексе "С 50" (элюция производилась линейным градиентом KCl). dnaA-содержащие фракции по данным ЭФ в ПААГ с ДСН содержали более 70% белка dnaA с мол. массой 52 кД. Исследования термостабильности dnaA показали, что он стабилизируется глицерином (в конц-ии 20-40%), но значительно большая стабилизация достигается при добавлении АТФ (2 мМ) и дитиотреитола совместно с глицерином. Стабилизация dnaA при связывании с АТФ согласуется с данными о его репликативной функции в комплексе с АТФ.

ГРНТИ	34.27.17

ВИНИТИ 341.27.17.09.11.07
Рубрики: ESCHERICHIA COLI (BACT.)
БЕЛКИ
БЕЛОК DNAA
ОЧИСТКА
ХАРАКТЕРИСТИКА
ТЕРМОСТАБИЛЬНОСТЬ
АТФ
РЕПЛИКАЗА

РЖ ВИНИТИ 34 (BI12) 89.05-04Б2.258

Bramhill, David.
A model for initiation at origins of DNA replication [Text] / David Bramhill, Arthur Kornberg // Cell. - 1988. - Vol. 25, N 7. - P915-918 . - ISSN 0092-8674
Перевод заглавия: Модель инициации в участках начала репликации
Аннотация: Предложена модель инициации репликации хромосомы Escherichia coli в локусе oriC, постулирующая, что белок DnaA имеет 3 главных функции: он прочно связывается с 9-членными повторами (dnaA-боксами) с образованием инициационного комплекса; он эффективно расплавляет 3 АТ-богатых 13-членных повтора с образованием открытых комплексов и, наконец, он направляет DNaB-DnaC-комплекс в этот расплавленный район с образованием презатравочного комплекса. Последний развинчивает ДНК-матрицу, обеспечивая возможность осуществления двунаправленной репликации. Рассмотрены возможные инициационные события не только в локусе oriC хромосомы Е. соli, но и в других участках начала репликации, включая хромосому B. subtilis, плазмиды pSC101, F, P1, R1, R6К, Р4, RК2, СolЕ1, а также лямбдоидные фаги. Предполагается, что у эукариот роль АТ-богатых последовательностей в открывании дуплекса в точке ori сходна с тем, что имеет место для ДНК вируса SV40. В последнем случае локус ori прочно связывается с Т-антигеном, являющимся белком-инициатором, кодируемым самим вирусом, и служащим одновременно хеликазой, а также раскручивающим дуплекс ДНК в ori. Рассмотрена также роль регуляторных факторов, таких как АТР, белок DnaC, транскрипционная активация ori и прикрепление белка DnaA к мембране. Сделан вывод, что многие прокариотические ori напоминают локус oriC E. coli наличием необходимых АТ-богатых последовательностей, локализованных в виде тандемных повторов. Роль этих повторов, вероятно, состоит в первоначальном открывании ДНК-дуплекса белком-инициатором. Регуляторное действие белков типа DnaA E. coli состоит в активации транскрипции ori, связывании нуклеотидов, прикреплении к мембране и формировании репликативной вилки. Ил. 2. США, Stanford Univ. School of Medicine Stanford, CA 94305.

ГРНТИ	34.27.21

ВИНИТИ 341.27.21.02.03
Рубрики: ESCHERICHIA COLI (BACT.)
ИНИЦИАЦИЯ РЕПЛИКАЦИИ
МОДЕЛЬ
УЧАСТКИ НАЧАЛА РЕПЛИКАЦИИ ORIC
БЕЛОК DNAA
ФУНКЦИИ

Доп.точки доступа:
Kornberg, Arthur

РЖ ВИНИТИ 34 (BI12) 89.02-04Б2.406

Nagata, Toshio.
Requirement of the Escherichia coli dnaA gene function for integrative suppression of dnaA mutations by plasmid R100 - 1 [Text] / Toshio Nagata, Yota Murakami, Mutsuo Imai // Mol. and Gen. Genet. - 1988. - Vol. 213, N 1. - P163-165
Перевод заглавия: Необходимость функции dnaA Escherichia coli при интегративной супрессии мутаций dnaA плазмидой R100 - 1
Аннотация: Штаммы E. coli с миссенс- и нонсенс-мутациями в гене dnaA супрессировались плазмидой R100 - 1, однако, супрессируемые штаммы не выживали, если функция dnaA была полностью инактивирована. Это было видно из невозможности заместить дефектный аллель dnaA вставкой dnaA:: Tn10 с помощью трансдукции (фаг P1). Когда же интактный аллель dnaA+ был дополнительно введен с помощью Р1, который интегрировал с хромосомой E. coli в сайте att, тогда dnaA::Tn10 вместе с делецией 'ДЕЛЬТА'oriC, удавалось ввести в супрессируемый штамм. Сделан вывод, что некоторые мутации dnaA нарушают взаимодействие DnaA-белка с ori C, но не с ori R100-1. Табл. 1. Библ. 19. Япония, Inst. for Virus Res., Kyoto Univ., Kyoto 606.

ГРНТИ	34.27.21

ВИНИТИ 341.27.21.15.03
Рубрики: ESCHERICHIA COLI (BACT.)
РЕПЛИКАЦИЯ
ИНИЦИАЦИЯ РЕПЛИКАЦИИ
DNAA БЕЛОК
ФУНКЦИИ
МУТАЦИИ
МУТАЦИИ ГЕНА DNAA
ИНТЕГРАТИВНАЯ СУПРЕССИЯ
ПЛАЗМИДА R100 - 1
ПЛАЗМИДЫ - КЛЕТКИ ВЗАИМОДЕЙСТВИЕ

Доп.точки доступа:
Murakami, Yota; Imai, Mutsuo

РЖ ВИНИТИ 34 (BI12) 89.02-04Б2.308

Hupp, Theodore R.
Suppression of the Escherichia coli dnaA46 mutation by a mutation in trxA, the gene for thioredoxin [Text] / Theodore R. Hupp, Jon M. Kaguni // Mol. and Gen. Genet. - 1988. - Vol. 213, N 2-3. - P471-478
Перевод заглавия: Супрессия мутации dnaA46 Escherichia coli мутацией в гене trxA тиоредоксина
Аннотация: Трансдукцией фагом Р1 мутация dasC, E. coli являющаяся внегенным супрессором мутации по инициации репликации хромосомной ДНК dnaA46, картирована на 84 мин карты E. coli в районе rep, trxA, rho. При этом оказалось, что dasC является аллелью гена trxA, кодирующего тиоредоксин. Сконструированные многокопийные гибридные плазмиды, несущие интактный ген trxA обеспечивали реверсию супрессорного эффекта мутации dasC в отношении мутации dnaA46. Введение мутации сдвига рамки в клонированный ген trxA подавило способность гибридной плазмиды ревертировать супрессорный эффект мутации dasC. Библ. 40. США, Michigan State Univ., East Lansing, MI 48824.

ГРНТИ	34.27.21

ВИНИТИ 341.27.21.02.03
Рубрики: ESCHERICHIA COLI (BACT.)
СУПРЕССОРНЫЕ МУТАЦИИ
МУТАЦИИ DNAA46
СУПРЕССИЯ
ПРОДУКТ СУПРЕССОРНОГО ГЕНА ТИОРЕДОКСИНА TRXA
РЕПЛИКАЦИЯ
ИНИЦИАЦИЯ

Доп.точки доступа:
Kaguni, Jon M.

РЖ ВИНИТИ 34 (BI12) 89.07-04Б2.209

Hughes, Patrick.
A novel role for cAMP in the control of the activity of the E. coli chromosome replication initiator protein, DnaA [Text] / Patrick Hughes, Ahmed Landoulsi, Masamichi Kohiyama // Cell. - 1988. - Vol. 55, N 2. - P343-350 . - ISSN 0092-8674
Перевод заглавия: Новая роль цАМФ в контроле активности DnaA, инициаторного белка репликации хромосомы E. coli
Аннотация: Белок DnaA обладает выраженным сродством к АТФ и слабой ДНК-зависимой АТФ-азной активностью. АТФ активирует DnaA в качестве инициатора репликатора ДНК. В данной работе установлено, что белок DnaA связывается с цАМФ с К=1 мкМ, причем на молекуле белка находится 'ЭКВИВ'1,18 сайтов связывания с цАМФ. Взаимодействие с цАМФ стимулирует связывание DnaA с локусом oriC, а также промоторным районом mioC. В результате присоединения к цАМФ белок DnaA защищается от термоинактивации, а его реактивация происходит за счет быстрого выхода АДФ после каждого акта гидролиза АТФ. Показано, что добавление цАМФ к неактивным препаратам DnaA, связанного с АДФ, восстанавливает нормальную инициирующую активность белка и его способность к гидролизу АТФ. Предложена модель, по к-рой уровень клеточной цАМФ контролирует репликативную активность белка DnaA, обеспечивая превращение неактивного АДФ-DnaA комплекса в активный, связанный с АТФ. Ил. 7. Табл. 3. Библ. 28. Франция, Institut Jacques Monod Tour 43 Universite Paris VII 2 Place Jussieu 75251 Paris Cedex 05.

ГРНТИ	34.27.21

ВИНИТИ 341.27.21.02.03
Рубрики: ESCHERICHIA COLI (BACT.)
АМФ ЦИКЛИЧЕСКИЙ
РОЛЬ
РЕПЛИКАЦИЯ
ORIC
ИНДУКЦИЯ
ДНК-СВЯЗЫВАЮЩИЕ БЕЛКИ
БЕЛОК DNAA - АДФ КОМПЛЕКС
АКТИВАЦИЯ

Доп.точки доступа:
Landoulsi, Ahmed; Kohiyama, Masamichi

РЖ ВИНИТИ 34 (BI12) 89.06-04Б2.202

Brasch, Michael A.
Integrative suppression of dnaA46 by broad host-range plasmid R1162 [Text] / Michael A. Brasch, Richard J. Meyer // Mol. and Gen. Genet. - 1988. - Vol. 215, N 1. - P139-145 . - ISSN 0026-8925
Перевод заглавия: Интегративная супрессия dnaA46 плазмидой широкого спектра R1162
Аннотация: Обнаружено, что интеграция плазмиды R1162 широкого спектра хозяев, идентичной IncQ-плазмидам RSF1010 и R300В, в хромосому E. coli мутанта dnaA46 приводит к супрессии мутантного фенотипа. Однако для этого требуются 2 условия: 1) наряду с интегрированной копией плазмиды в цитоплазме мутанта должны присутствовать дополнительно автономные копии; 2) дефектный участок начала репликации плазмиды, также должен присутствовать в хромосоме. Предполагается, что этот неактивный участок начала репликации устанавливает скорость инициации репликации хромосомы на уровне, совместимом с выживаемостью клеток. Возможно, что это происходит за счет образования дополнительных сайтов связывания с белком, кодируемым R1162, ограничивающим скорость плазмидной репликации. Ил. 2. Табл. 5. Библ. 34. США, Univ. of Texas at Austin, Austin, TX 78712-1095.

ГРНТИ	34.27.21

ВИНИТИ 341.27.21.02.03
Рубрики: ПЛАЗМИДА R1162
ШИРОКИЙ КРУГ ХОЗЯЕВ
ИНТЕГРАЦИЯ
ХРОМОСОМА
МУТАНТЫ
ГРАМОТРИЦАТЕЛЬНЫЕ БАКТЕРИИ
МУТАНТ DNAA46
ИНТЕГРАТИВНАЯ СУПРЕССИЯ
ПЛАЗМИДЫ-БАКТЕРИИ ВЗАИМОДЕЙСТВИЕ

Доп.точки доступа:
Meyer, Richard J.

РЖ ВИНИТИ 34 (BI12) 89.06-04Б2.199

Yung, Benjamin Yat-ming.
Membrane attachment activates dnaA protein, the initiation protein of chromosome replication in Escherichia coli [Text] / Benjamin Yat-ming Yung, Arthur Kornberg // Proc. Nat. Acad. Sci. USA. - 1988. - Vol. 85, N 19. - P7202-7205 . - ISSN 0027-8424
Перевод заглавия: Присоединение к мембране активирует белок dnaA, белок, инициирующий репликацию хромосомы Escherichia coli.
Аннотация: Ранее было установлено, что АДФ и АТФ прочно связывается с белком dnaA, что является существенным для его функционирования в репликации ДНК. Обмен этими нуклеотидами специфично затрагивается кислыми фосфолипидами (кардиолипином и фосфатидилглицерином), присутствующими в мембранах E. coli. В данной работе обнаружено, что фосфолипиды, выделенные из мембран, лишенных ненасыщенной жирной к-ты, напр. олеиновой к-ты, неспособны обеспечить такой обмен. Это наблюдение строго коррелирует с известным эффектом 3-дециноил-Nацетилцистамина - "суицидального аналога", подавляющего инициацию цикла репликации хромосомы E. coli за счет подавления синтеза олеиновой к-ты, к-рое м. б. компенсировано за счет добавления ее извне. Специфичность связывания белка dnaA с фосфолипидами значительно зависит от т-ры, содержания ненасыщенных жирных к-т и включения холестерина. Полученные данные свидетельствуют в пользу того, что связывание белка dnaA с мембраной является абсолютно необходимым для его функционирования в инициации репликации хромосомы. Ил. 6. Библ. 25. США, Stanford Univ. School of Medicine, Stanford, CA 94305.

ГРНТИ	34.27.21

ВИНИТИ 341.27.21.02.03
Рубрики: ESCHERICHIA COLI (BACT.)
РЕПЛИКАЦИЯ
ИНИЦИАЦИЯ РЕПЛИКАЦИИ
АКТИВАЦИЯ
МЕМБРАНЫ
ФОСФОЛИПИДЫ
ОЛЕИНОВАЯ КИСЛОТА
ВЗАИМОДЕЙСТВИЕ
БЕЛОК DNAA

Доп.точки доступа:
Kornberg, Arthur

РЖ ВИНИТИ 34 (BI12) 90.05-04Б2.235

Chiaramello, Anne E.
Expression of Escherichia coli dnaA and mioC genes as a function of growth rate [Text] / Anne E. Chiaramello, Judith W. Zyskind // J. Bacteriol. - 1989. - Vol. 171, N 8. - P4272-4280 . - ISSN 0021-9193
Перевод заглавия: Экспрессия генов dnaA и mioC Escherichia coli как функция скорости роста
Аннотация: Показано, что кол-во белка DnaA в Кл Escherichia coli, регулируется скоростью роста, увеличиваясь с увеличением числа удвоений культуры за 1 ч. Одновременно происходит увеличение мРНК, транскрибирующейся с промотора гена mioC, расположенного в районе oriC. Экспрессия с этого промотора, содержащего сайт связывания с DnaA, не репрессируется с увеличением конц-ии DnaA и не дерепрессируется в мутанте dnaA46 при 42'ГРАДУС'. Показано, что транскрипт mioC имеет период полураспада 1,51 мин. Сделан вывод, что синтез специфических клеточных компонентов, связанных с процессами инициации репликации ДНК, коррелирует с изменениями в скорости роста. Библ. 59.

ГРНТИ	34.27.21

ВИНИТИ 341.27.21.02.03
Рубрики: ESCHERICHIA COLI (BACT.)
ГЕНЫ
ГЕН MIO
ГЕН DNAA
ЭКСПРЕССИЯ ГЕНОВ
КОРРЕЛЯЦИЯ
СКОРОСТЬ РОСТА
РЕПЛИКАЦИЯ
УЧАСТОК ORI

Доп.точки доступа:
Zyskind, Judith W.

РЖ ВИНИТИ 34 (BI12) 89.09-04Б2.291

Richet, Evelyne.
MalT, the regulatory protein of the Escherichia coli maltose system, is an ATP-dependent transcriptional activator [Text] / Evelyne Richet, Olivier Raibaud // EMBO Journal. - 1989. - Vol. 8, N 3. - P981-987 . - ISSN 0261-4189
Перевод заглавия: MalT, регуляторный белок мальтозной системы Escherichia coli, является АТФ-зависимым активатором транскрипции
Аннотация: Белок MalT осуществляет контроль экспрессии мальтозного регулона Escherichia coli, который содержит несколько оперонов. Эти опероны кодируют белки, участвующие в транспорте и катаболизме мальтодекстринов. MalT имеет мол. м. 102 kD, специфично связывается с промоторными районами ДНК, мальтотреозой, АТФ и является активатором транскрипции. Исследовали роль АТФ в процессе активации транскрипции данным белком. Показали, что для образования открытого комплекса MalT с ДНК требуется одновременное присутствие и АТФ и мальтотреозы. Этот этап активации транскрипции не требует гидролиза АТФ. Полагают, что механизм действия MalT имеет сходство с механизмом действия белка DnaA, активатором инициации репликации ДНК Esherichia coli. Библ. 24. Франция, Unite de Genetique Mol., Inst. Pasteur, 28 rue du Dr. Roux, 75015 Parix Cedex 15.

ГРНТИ	34.27.21

ВИНИТИ 341.27.21.02.17
Рубрики: ESCHERICHIA COLI (BACT.)
ТРАНСКРИПЦИЯ
АКТИВАЦИЯ
MALT БЕЛОК
ГЕНЫ
МАЛЬТОЗНЫЙ РЕГУЛОН
ЭКСПРЕССИЯ
АТФ
МАЛЬТОТРЕОЗА
ВЗАИМОДЕЙСТВИЕ С АТФ
ОТКРЫТЫЙ КОМПЛЕКС
БЕЛОК DNAA

Доп.точки доступа:
Raibaud, Olivier

10.

РЖ ВИНИТИ 34 (BI12) 89.09-04Б2.358

Oppermann, Timothy.
Chloroplast and nuclear genomes of Chlamydomonas reinhardtii share homology with Escherichia coli genes for DNA replication, repair and transcription [Text] / Timothy Oppermann, Tsai-Hsia Hong, Stefan J. Surzycki // Curr. Genet. - 1989. - Vol. 15, N 1. - P39-46 . - ISSN 0172-8083
Перевод заглавия: Геномы хлоропластов и ядра Chlamydomonas reinhardtii обнаруживают гомологию с генами репликации, репарации и транскрипции ДНК Escherichia coli
Аннотация: Для поиска гомологичных последовательностей в геноме хлоропластов Chlamydomonas reinhardtii в кач-ве зондов использовали гены E. coli: dnaA, rec A, uvrC, фактора транскрипции rho и rpoC. Хлоропластную и ядерную ДНК C. reinhardtii расщепляли рестриктазами и полученные фрагменты гибридизовали с мечеными ДНК - зондами E. coli. Области гомологии для всех генов картируются в геноме хлоропластов, причем обнаружено, что некоторые входят в состав кластеров в 3 локусах карты. Ядерный геном C. reinhardtii содержит последовательности гомологичные бактериальным генам dnaA и proC. Наличие гомологичных последовательностей в геноме хлоропластов и ядра C. reinhardtii не означает, что в геноме присутствуют функционально аналогичные гены. Для дальнейшего изучения этих генов необходимо их клонирование и изучение продуктов. Ил. 7. Табл. 1. Библ. 57. США, Dep. of Biology, Indiana University, Bloomington, IN 47405.

ГРНТИ	34.27.21

ВИНИТИ 341.27.21.02.03
Рубрики: CHLAMYDOMONAS REINHARDTII (ALGAE)
ДНК ХЛОРОПЛАСТНАЯ
ДНК ЯДЕРНАЯ
ГЕНЫ РЕПЛИКАЦИИ DNAA
ГЕНЫ РЕПАРАЦИИ UVRC
ГЕНЫ ТРАНСКРИПЦИИ RHO
ИДЕНТИФИКАЦИЯ
ДНК-ЗОНДЫ
ESCHERLCHIA COLI (BACT.)

Доп.точки доступа:
Hong, Tsai-Hsia; Surzycki, Stefan J.

11.

РЖ ВИНИТИ 34 (BI12) 90.04-04Б2.517

Репликация миниплазмидного деривата РК2 in vitro с помощью ДНК-мембранного комплекса, экстрагированного из Escherichia coli: вовлеченность хозяйского белка dnaA, но не dnaK и ассоциация этих и кодируемых плазмиminiplasmid derivative in vitro by a DNA/membrane complex extracted from Escherichia coli: involvement of the dnaA but not dnaK host proteins and association of these and plasmidencoded proteins with the inner membrane [Text] / David A. Kostyal [et al.] // Plasmid. - 1989. - Vol. 21, N 3. - P226-237
Аннотация: Из шт. Escherichia coli K12 YS1 - продуцента мини-Кл, содержащего плазмиду pRK2501 (11,2 т. п. н.), являющуюся минидериватом плазмиды RK2, сохранившим локус OriV, районы trfA и trfB, кодирующие белки, необходимые для инициации репликации, а также другие белки, необходимые для поддержания плазмидной ДНК, выделен комплекс этой ДНК с мембраной. Этот комплекс обрабатывали антителами против хозяйских белков dnaA и dnaK. Выявлено, что антитела против dnaA существенно подавляют суммарный синтез плазмидной ДНК, причем синтез сверхскрученной ДНК подавляются почти полностью. Напротив, антитела против dnaK, а также неиммунная сыворотка практически не влияли на синтез суммарной плазмидной ДНК. Белки dnaA и dnaK обнаружены во внутренней, но не в наружной мембране Кл E. coli. Также распределяются различные белки, кодируемые миниплазмидой и также ранее выявленные в составе ДНК-мембранного комплекса. К ним относится необходимый для инициации репликации белок 32 кДа, перекрывающий его белок 43 кДа, кодируемый тем же геном, а также белок 30 кД, связанный возможно с функциями несовместимости. Установлено, что все эти белки тесно связаны с внутренней мембраной. Компьютерный анализ АК-последовательности белка 32 (и 43) кДа обнаружил наличие гидрофобного района, к-рый, однако, в два раза меньше того, что нормально требуется для мембранных белков. Ил. 7. Библ. 42. США, Wesleyan Univ., Middletown Connecticut 06457.

ГРНТИ	34.27.21

ВИНИТИ 341.27.21.15.03
Рубрики: ESCHERICHIA COLI (BACT.)
ШТАММ YS1
ПЛАЗМИДА PRK2051
ПРОИЗВОДНЫЕ РК2
ДНК ПЛАЗМИДНАЯ
РЕПЛИКАЦИЯ
ВЗИМОДЕЙСТВИЕ
ХОЗЯЙСКИЙ БЕЛОК DNAA
ВНУТРЕННЯЯ МЕМБРАНА

Доп.точки доступа:
Kostyal, David A.; Farrell, Michael; McCabe, Ann; Mei, Zhu; Firshein, William

12.

РЖ ВИНИТИ 34 (BI12) 90.04-04Б2.518

Itoh, Yoshifumi.
Replication properties of mini-Rts1 derivatives deleted for DnaA boxes in the replication origin [Text] / Yoshifumi Itoh, Yoshiro Terawaki // Plasmid. - 1989. - Vol. 21, N 3. - P242-246
Перевод заглавия: Репликативные свойства мини-Rts1 дериватов, делетированных по DnaA-боксам в участке начала репликации
Аннотация: Выявлено, что плазмида мини-Rts1 неспособна реплицироваться в dnaA-мутанте Escherichia coli. Вместе с тем, дериват мини-Rts1, утративший в районе ori репликации полный тандем DnaA-боксов, реплицируется в Кл dnaA+, хотя его копийность снижается наполовину по сравнению с плазмидой, содержащей DnaA-боксы. Плазмида мини-Rts1 cop1, несущая мутацию, увеличивающую число копий в repAхозяине, реплицируется в нем более эффективно, чем исходная плазмида, если делетированы DnaA-боксы. Число копий мини-Rts1cop1 с делецией по DnaA-боксам увеличивается в 1,5 раза при удалении локуса inc1, тогда как миниRts1 с такой же делецией DnaA-боксов не увеличивает копийность после удаления дополнительно локуса inc1. Отсюда сделан вывод, что белок RepAcop1 может инициировать репликацию мини-Rts1 достаточно эффективно даже в случае делеции DnaA-боксов в районе репликации ori. Табл. 2. Библ. 37. Япония, Shinshu Univ. School of Medicine, Asahi 3-1-1, Matsumoto 390.

ГРНТИ	34.27.21

ВИНИТИ 341.27.21.15.03
Рубрики: ESCHERICHIA COLI (BACT.)
МУТАНТЫ DNA
ПЛАЗМИДА ЛИНИИ-RTS1
ПРОИЗВОДНЫЕ
ДНК ПЛАЗМИДНАЯ
ДЕЛЕЦИИ DNAA-БОКСЫ
РЕПЛИКАЦИЯ

Доп.точки доступа:
Terawaki, Yoshiro

13.

РЖ ВИНИТИ 34 (BI12) 89.10-04Б2.432

Bramhill, David.
DNA polymerase activities and A dnaA gene in Rhizobium meliloti [Text] / David Bramhill, Silaron Long // J. Cell. Biochem. - 1989. - Suppl. N13D. - P118 . - ISSN 0730-2312
Перевод заглавия: ДНК-полимеразные активности и ген dnaA у Rhizobium meliloti
Аннотация: Грамотрицательный бактерии Rhizobium meliloti необычны тем, что содержат 3 репликона хромосомного типа. Поэтому она может служить модельной системой для изучения координированной регуляции инициации репликации хромосомы с локусов ori. Выявлено, что в экстрактах этих бактерий присутствует 2 различные ДНК-полимеразные активности. Процессирующаяся полимераза, способная эффективно реплицировать затравочную ДНК вируса М13, преципитируется низкой конц-ией сульфата аммония (0,2 г/мл). Этот фермент напоминает холофермент ДНК-полимеразы III E. coli по способности стимулироваться белком SSB и чувствительности к разведению и полимеразной активности. Сульфат аммония в конц-ии выше 0,26 г/мл преципитирует другую полимеразу, к-рая наиболее активна в отношении дуплексных ДНК-субстратов, содержащих множество "ник-разрывов" и брешей. Эта последняя активность не стимулируется SSB и не чувствительна к разведению. Клонирован также ген R. meliloti подобный гену dnaA E. coli. Выявлено, что последовательности генов dnaA E. coli, P. putida и B. subtilis содержат консервативные районы. Участок консервативного района длиной 38 п. н. использован в качестве ДНК-зонда для исследования предпочтительного использования кодонов у R. meliloti. Обнаружено, что этот зонд избирательно гибридизуется с последовательностью, присутствующей в ДНК R. meliloti, но не E. coli. 38-членный олигонуклеотид позволил выявить 3 независимых клона гена dnaA R. meliloti, несущих перекрывающиеся фрагменты ДНК. Эти фрагменты были субклонированы с целью их секвенирования и анализа кодируемых белков. США, Stanford Univ., Stanford, CA 94305.

ГРНТИ	34.27.21

ВИНИТИ 341.27.21.02.03
Рубрики: RHIZOBIUM MELILOTI (BACT.)
РЕПЛИКАЦИЯ
ИНИЦИАЦИЯ РЕПЛИКАЦИЯ
УЧАСТОК ORI
КООРДИНИРОВАННАЯ РЕГУЛЯЦИЯ
ДНК-ПОЛИМЕРАЗА
ХОЛОФЕРМЕНТ
ФЕРМЕНТАТИВНАЯ АКТИВНОСТЬ
ГЕНЫ
ГЕН DNAA
КЛОНИРОВАНИЕ
ИДЕНТИФИКАЦИЯ

Доп.точки доступа:
Long, Silaron

14.

РЖ ВИНИТИ 34 (BI12) 89.09-04Б2.266

Yung, Benjamin Y. -M.
DnaA protein in initiation of replication from the origin (oriC) of the E. coli chromosome [Text] / Benjamin Y. -M. Yung, Arthur Kornberg // J. Cell. Biochem. - 1989. - Suppl. N13d. - P147 . - ISSN 0730-2312
Перевод заглавия: Белок DnaA в инициации репликации от ориджина (oriC) хромосомы E. coli
Аннотация: Выявлено, что белок-инициатор dnaA при своем взаимодействии с oriC эффективно связывается с 4 9-членными dnaA-боксами с образованием инициационного комплекса; связывается и затем расплавляет 3 тандемных 13-членных последовательности в прилегающем АТ-богатом районе с образованием открытого комплекса; способствует проникновению белка dnaB в этот расплавленный район с образованием препраймерного комплекса, от которого Хеликазная активность белка dnaB формирует новые вилки двунаправленной репликации. Для этого типа активности dnaA требуется его прочное связывание с АТФ. Белок ШУ при т-ре 25'ГРАДУС' стабилизирует связь комплекса АТФ - белок dnaA с 13-членной последовательностью. Контролируемый протеолиз белка dnaA приводит к быстрой утрате его связи с oriC, NH[2]-концевой пептид 30 кД содержит домен, связывающийся с АТФ и фосфолипидами, дестабилизирующими прочность связи с АТФ. Показано, что связывание белка dnaA с головной группой кислых фосфолипидов в жидком двойном слое дестабилизирует прочность присоединения АТФ и ведет к появлению неактивной АДФ-формы. США, Stanford Univ. School of Medicine, Stanford, CA 94305.

ГРНТИ	34.27.21

ВИНИТИ 341.27.21.02.03
Рубрики: ESCHERICHIA COLI (BACT.)
РЕПЛИКАЦИЯ
ИНИЦИАЦИЯ РЕПЛИКАЦИИ
МЕХАНИЗМЫ
ИНИЦИИРУЮЩИЙ КОМПЛЕКС РЕПЛИКАЦИИ
БЕЛОК DNAA
ДНК-БЕЛКОВОЕ ВЗАИМОДЕЙСТВИЕ
УЧАСТОК ORI

Доп.точки доступа:
Kornberg, Arthur

15.

РЖ ВИНИТИ 34 (BI12) 89.09-04Б2.263

Coupling of growth rate and dna replication: The roles of the mioC transcript and DnaA protein [Text] / Anne E. Chiaramello [et al.] // J. Cell. Biochem. - 1989. - Suppl. N13d. - P121 . - ISSN 0730-2312
Перевод заглавия: Взаимосвязь между скоростью роста клетки и репликацией ДНК: роль белка DnaA и транскрипции гена mioC
Аннотация: Инициация репликации хромосомы Escherichia coli с участка oriC требует синтеза транскрипта РНК. Синтез этого транскрипта, как полагают, начинается с промотора гена mioC. Исследовали зависимость синтеза этого транскрипта от скорости роста клетки. Установили, что промотор гена mioC очень чувствителен к изменениям скорости роста и слабо регулируется белком DnaA. Обнаружили, что с увеличением скорости роста клетки возрастает и концентрация белка DnaA в ней. Полагают, что, при высокой концентрации в клетке, белок DnaA взаимодействует со всеми специфическими участками в oriC и mioC и тем самым подавляет репликацию ДНК и рост клетки. США, Dep. of Biol. and Mol. Biol. Inst., San Diego State Univ., San Diego, CA 92182.

ГРНТИ	34.27.21

ВИНИТИ 341.27.21.02.03
Рубрики: ESCHERICHIA COLI (BACT.)
РОСТ
РЕПЛИКАЦИЯ
БЕЛОК РЕПЛИКАЦИИ DNAA
КОНЦЕНТРАЦИЯ
ГЕНЫ
ГЕН MIOC
ТРАНСКРИПЦИЯ
ЗАВИСИМОСТЬ ОТ РОСТА КЛЕТКИ

Доп.точки доступа:
Chiaramello, Anne E.; Uitenbogaard, Martine N.; Svitil, Amy L.; Zyskind, Judith W.

16.

РЖ ВИНИТИ 34 (BI12) 89.09-04Б2.262

Bremer, H.
Chromosome replication in E. coli induced by oversupply of DnaA [Text] / H. Bremer, Y. -C. Xu // J. Cell. Biochem. - 1989. - Suppl. N13d. - P119 . - ISSN 0730-2312
Перевод заглавия: Репликация хромосомы у E. coli, индуцированная избытком DnaA
Аннотация: В dnaA+ шт., несущем дополнительные копии гена dnaA, экспрессирующиеся в составе многокопийной плазмиды с индуцируемого промотора lacUV5, исследовали репликацию бактериальной хромосомы. При 42'ГРАДУС' в минимальной среде сверхэкспрессия DnaA ведет к инициации 1 дополнительного раунда репликации в каждом клеточном цикле. Этот эффект не наблюдается в богатой среде (LB) либо при 30'ГРАДУС'. Предполагается, что время инициации зависит от этапа, предшествующего этапу, на к-ром действует DnaA, и что в условиях повышенной т-ры и сниженного синтеза белка в минимальной среде, нефизиологически высокий уровень белка DnaA приводит к единичному импульсному раунду репликации в нормальное время клеточного цикла. Этот дополнительный раунд репликации не запускает добавочное клеточное деление после своего завершения, что ведет к образованию диплоидов. Когда число копий хромосомы удваивается таким способом, эта дополнительная хромосома продолжает реплицироваться 1 раз в каждой генерации, по-видимому синхронно с другой хромосомой, подобно тому, как это происходит с плазмидой oriC. Этот результат показывает, что представления о постоянстве массы в расчете на ori и модели контроля репликации числом локусов ori д. б. пересмотрены. США, Univ. of Texas at Dallas, P. O. Box 688, Richardson, TX 75080.

ГРНТИ	34.27.21

ВИНИТИ 341.27.21.02.03
Рубрики: ESCHERICHIA COLI (BACT.)
ДНК ХРОМОСОМНАЯ
РЕПЛИКАЦИЯ
ИНДУКЦИЯ
БЕЛОК DNAA
ИЗБЫТОК
ДОПОЛНИТЕЛЬНЫЙ РАУНД РЕПЛИКАЦИИ

Доп.точки доступа:
Xu, Y.-C.

17.

РЖ ВИНИТИ 34 (BI12) 89.09-04Б2.320

Fujita, Masaki Q.
Structure of the dnaA region of Pseudomonas putida: Conservation among three bacteria, Bacillus subtilis, Escherichia coli and P. putida [Text] / Masaki Q. Fujita, Hiroshi Yoshikawa, Naotake Ogasawara // Mol. and Gen. Genet. - 1989. - Vol. 215, N 3. - P381-387 . - ISSN 0026-8925
Перевод заглавия: Структура района dnaA у Pseudomonas putida: консервативность у трех бактерий, Bacillus subtilis, Escherichia coli и P. putida
Аннотация: Фрагмент, содержащий цистрон dnaA E. coli был выделен из гибридной плазмиды psY342 и использован в качестве ДНК-пробы для выявления соответствующего гена у P. putida. С помощью блот-гибридизации выявлен EcoRI-фрагмент ДНК P. putida длиной 5,2 т. п. н., гибридизующийся с указанной пробой. Этот фрагмент был далее клонирован и частично секвенирован. Помимо dnaA в его составе находятся также гены dnaN, recF и gyrB. Выявлено, что весь этот район выраженно гомологичен району dnaA хромосом E. coli и B. subtilis. Нетранслирующийся участок 600 п. н., расположенный немедленно выше гена dnaA, также консервативен у 3-х указанных видов бактерий и содержит соответственно 3,12 и 14 последовательностей типа ТТАТССАСА, служащих DnaAбоксами. Отмечается, что полученные результаты подтверждают гипотезу, что район dnaA является районом начала репликации у исходной для этих видов бактерии. Сделано заключение, что существенные черты комбинации гена dna A и Dna A-бокса характеризуются консервативностью у всех эубактерий и играют центральную роль в инициации репликации хромосомы. Ил. 5. Табл. 1. Библ. 21. Osaka Univ., Medical School 3-57, Nakanoshima-4-chome, Kitaku, Osaka 530.

ГРНТИ	34.27.21

ВИНИТИ 341.27.21.02.03
Рубрики: PSEUDOMONAS PUTIDA (BACT.)
ГЕНОМ
ЛОКУС DNAA
ОРГАНИЗАЦИЯ
КОНСЕРВАТИВНОСТЬ
СРАВНЕНИЕ
BACILLUS SUBTILIS (BACT)
ESCHERICHIA COLI (BACT.)

Доп.точки доступа:
Yoshikawa, Hiroshi; Ogasawara, Naotake

18.

РЖ ВИНИТИ 34 (BI12) 89.09-04Б2.268

In vivo studies of DnaA binding to the origin of replication of Escherichia coli [Text] / Craig E. Samitt [et al.] // EMBO Journal. - 1989. - Vol. 8, N 3. - P989-993 . - ISSN 0261-4189
Перевод заглавия: Изучение in vivo связывания DnaA с участком начала репликации Escherichia coli
Аннотация: Показано, что белок DnaA, необходимый для инициации репликации ДНК у E. coli, присоединяется к 3 из 4 DnaAсвязываемых последовательностей в участке начала репликации oriC. (бокс R1, R2, R4) Минихромосомы в dna (Тс)мутантах не только не обнаруживают связывания с DnaA при непермиссивной температуре, но обладают сниженной эффективностью связывания при пермиссивной температуре. Показатели процессов связывания in vivo в штамме дикого типа были идентичны таковым, полученным in vitro с использованием очищенных DnaA и oriC ДНК. Транскрипция в oriC влияет на связывание DnaA в бокс- DnaA. Эти данные свидетельствуют о том, что именно белок DnaA обеспечивает связывание с oriC in vivo. Ил. 5. Библ. 32. США, Dept. of Molecular Biology and Microbiology, Tufts Univ. Sch. of Medicine, 136 Harrison Ave., Boston MA 02111.

ГРНТИ	34.27.21

ВИНИТИ 341.27.21.02.03
Рубрики: ESCHERICHIA COLI (BACT.)
РЕПЛИКАЦИЯ
ДНК-БЕЛКОВОЕ ВЗАИМОДЕЙСТВИЕ
IN VIVO
УЧАСТОК НАЧАЛА РЕПЛИКАЦИИ ORIC
БЕЛОК DNAA

Доп.точки доступа:
Samitt, Craig E.; Hansen, Flemming G.; Miller, Jeffery F.; Schaechter, Moselio

19.

РЖ ВИНИТИ 34 (BI12) 89.09-04Б2.267

Lobner-Olesen, Anders.
The dnaA protein determines the time of initiation of DNA replication in Escherichia coli [Text] / Anders Lobner-Olesen, Erik Boya, Kiraten Skaratad // J. Cell. Biochem. - 1989. - Suppl. N13d. - P118 . - ISSN 0730-2312
Перевод заглавия: Белок DnaA определяет время инициации репликации ДНК у Escherichia coli
Аннотация: Путем подстановки гена dnaA под контроль различных индуцируемых промоторов изменяли скорость транскрипции и конц-ию белка dnaA в несколько раз ниже и выше уровня характерного для дикого типа. Когда конструкцию plac-dnaA+ вводили в шт. dnaA46, выращенный при 42'ГРАДУС' с добавлением ИПТГ, было обнаружено, что при очень низких конц-иях индуктора (0,07 мМ) отношение ДНК/масса низкое и Кл образуют филаменты. При 0,09 мМ ИРТГ скорость роста, содержание ДНК, масса Кл, время и синхронность инициации были теми же, что и в контрольных Кл дикого типа. С увеличением концентрации ИПТГ инициация клеточного цикла происходила раньше, а инициационная масса снижалась. Внезапное увеличение уровня экспрессии при использовании промотора 'лямбда'pL при 42'ГРАДУС' приводит к быстрому 2-кратному увеличению числа ori и 40% увеличению содержания ДНК. Полученные данные показывают, что при определенном, постоянном уровне экспрессии гена dnaA поддерживается нормальный контроль репликации ДНК и что белок dnaA ограничивает инициацию при нормальных физиологических условиях. Норвегия, Inst. of Cancer Research, 0310 Oslo 3.

ГРНТИ	34.27.21

ВИНИТИ 341.27.21.02.03
Рубрики: ESCHERICHIA COLI (BACT.)
РЕПЛИКАЦИЯ
ДНК
ИНИЦИАЦИИ РЕПЛИКАЦИИ
ВРЕМЯ
РЕГУЛЯЦИЯ
РЕГУЛЯТОРНЫЕ БЕЛКИ
БЕЛОК DNAA
ФУНКЦИИ

Доп.точки доступа:
Boya, Erik; Skaratad, Kiraten

20.

РЖ ВИНИТИ 34 (BI12) 90.04-04Б2.214

Pierucci, Olga.
DnaA protein overproduction abolishes cell cycle specificity of DNA replication from oriC in Escherichia coli [Text] / Olga Pierucci, Michael Rickert, Charles E. Helmstetter // J. Bacteriol. - 1989. - Vol. 171, N 7. - P3760-3766 . - ISSN 0021-9193
Перевод заглавия: Сверхпродукция белка DnaA подавляет специфичность клеточного цикла при репликации ДНК от oriC у Escherichia coli
Аннотация: Известно, что инициация репликация ДНК с локуса oriC происходит в специфичное время клеточного цикла, независимо от того локализуется ли oriC в хромосоме или в минихромосоме/плазмиде с клонированным oriC/, и требует участия продукта гена dnaA. С помощью минихромосом рAL49 и рAL4 в системе их репликации in vivo исследовано влияния гиперпродукции белка DnaA на специфичность времени инициации во время клеточного цикла. Гиперпродукция DnaA достигалась введением в клетки гибридных плазмид pAL08 или pTAC1445, несущих ген dnaA под контролем промоторов р'лямбда' либо ptac соответственно. Выявлено, что индукция синтез белка DnaA вызывает всплеск репликации минихромосомы на всех стадиях клеточного цикла. Уровень всплеска соответствует инициации одного раунда в расчете на 1 минихромосому во всех клетках. Вслед за подъемом репликации следует период ее снижения, более выраженный при 30, чем при 41'ГРАДУС'. Полученные результаты подкрепляют идею о том, что белок DnaA участвует в репликации с локуса oriC на стадии, лимитированной по инициации. Избыток белка DnaA позволяет всем клеткам достигнуть состояния, требующегося для инициации полимеризации ДНК за счет влияния на нормальный лимитированный процесс. Ил. 6. Библ. 42. США, Roswell Park Memorial Inst., Buffalo, NI 14263.

ГРНТИ	34.27.21

ВИНИТИ 341.27.21.02.03
Рубрики: ESCHERICHIA COLI (BACT.)
РЕПЛИКАЦИЯ
ИНИЦИАЦИЯ РЕПЛИКАЦИИ
УЧАСТОК ORI
ДНКСВЯЗЫВАЮЩИЕ БЕЛКИ
БЕЛОК DNAA
СВЕРХСИНТЕЗ
ВЛИЯНИЕ НА
КЛЕТОЧНЫЙ ЦИКЛ
СПЕЦИФИЧНОСТЬ
ПОДАВЛЕНИЕ

Доп.точки доступа:
Rickert, Michael; Helmstetter, Charles E.

1-20 21-40 41-60 61-80 81-100 101-120

"Электронные каталоги и базы данных библиотек СО РАН"

© Международная Ассоциация пользователей и разработчиков электронных библиотек и новых информационных технологий
(Ассоциация ЭБНИТ)

rtvarBDview(" результаты поиска","20190607010228","4682442");

Вид поиска