СибНСХБ

Вид поиска

Область поиска

Найдено в других БД

Формат представления найденных документов:
библиографическое описание	краткий	полный

Отсортировать найденные документы по:
автору	заглавию	году издания	типу документа

Поисковый запрос: (<.>A=Стефанова, В. Н.$<.>)

Общее количество найденных документов : 18
Показаны документы с 1 по 18

РЖ ВИНИТИ 34 (BI49) 00.11-04Я6.50

Демин, С. Ю.
Исследование структуры хроматина и хромосом на препаратах дериватов интерфазных ядер, полученных путем удаления оболочек ядер [Текст]. III. Структурная гетерогенность хроматина и аргентофильной зоны ядрышка в растянутых безмембранных ядрах и хроматиновых телах из периферических лимфоцитов человека / С. Ю. Демин, В. Н. Стефанова // Цитология. - 2000. - Т. 42, N 5. - С. 473-85 . - ISSN 0041-3771
Аннотация: Плотноагрегированный хроматин и ядрышки лимфоцитов и ряда других покоящихся клеток человека и животных на традиционных цитологических препаратах выглядят почти гомогенными структурами. В настоящей работе описаны многочисленные морфологические варианты фибриллярных хроматиновых структур и аргентофильной зоны ядрышка, к-рые с высоким контрастом разрешаются в безмембранных ядрах (БМЯ) и хроматиновых телах (ХТ), выделенных из интактных периферических лимфоцитов здоровых доноров с помощью мягкой обработки детергентом Тритоном X-100 и после фиксации метанолом-уксусной к-той (3:1) растянутых на предметном стекле. Установлено, что по морфологии примембранного слоя хроматина растянутые и уплощенные БМЯ близки к разверткам поверхности объемных ядер на их экваториальной плоскости, к-рые получают с помощью компьютерной количественной видеомикроскопии. По этой х-ке препараты БМЯ принципиально отличаются от препаратов уплощенных и растянутых ядер, получаемых с помощью центрифугирования клеток, поскольку рисунок хроматина в ядрах последнего типа ближе к изображениям проекций исходных объемных ядер на плоскость предметного стекла. При изучении препаратов безмембранных дериватов ядер выявлены случаи продольной и поперечной неоднородности конденсатов хроматина в БМЯ и единичных хроматиновых фибрилл в составе ХТ; разнообразные варианты сегментации аргентофильной зоны растянутого кольцевидного ядрышка БМЯ и фибриллярная организация аналогичной зоны в таких ядрышках в составе ХТ; вариабельность числа микроядерных в лимфоцитарных БМЯ или ХТ, выделенных из одной и той же пробы донорской крови. Подробно рассмотрены новейшие экспериментальные данные о структурно-функциональной организации интерфазного хроматина, ядрышка и его аргентофильной зоны. Обсуждены методические аспекты проведенной работы. Показано, что результаты проделанного исследования не противоречат современным представлениям об организации интерфазного хроматина и ядрышка in situ в ядре интактных клеток человека и животных и в некоторых отношениях существенно дополняют их. Россия, Ин-т цитологии РАН, С.-Петербург. Библ. 71

ГРНТИ	34.19.17

ВИНИТИ 341.19.17.09.01
Рубрики: ЯДРО
ХРОМАТИН КОНДЕНСИРОВАННЫЙ
КОЛЬЦЕВИДНОЕ ЯДРЫШКО
ПЕРИФЕРИЧЕСКИЕ ЛИМФОЦИТЫ
ЧЕЛОВЕК

Доп.точки доступа:
Стефанова, В.Н.

РЖ ВИНИТИ 34 (BI49) 01.01-04Я6.68

Демин, С. Ю.
Исследование структуры хроматина и хромосом на препаратах дериватов интерфазных ядер, полученных путем удаления оболочек ядер [Текст]. IV. Структурная гетерогенность расплавленного хроматина в безмембранных дериватах ядер периферических лимфоцитов человека / С. Ю. Демин, В. Н. Стефанова // Цитология. - 2000. - Т. 42, N 5. - С. 486-501 . - ISSN 0041-3771
Аннотация: Изучали препараты безмембранных производных ядер периферических лимфоцитов человека, полученные с помощью разработанного авт. метода, включающего в себя инкубацию клеток в среде, содержащей детергент Тритон Х-100. Подобные препараты содержат ДАФИ- и Гимза-позитивные безмембранные ядра (БМЯ) и хроматиновые тела (ХТ) следующих морфотипов: плотные ХТ, рыхлые ХТ и ядерные спрэды (ЯС), кол-во которых на препаратах можно варьировать путем изменения концентрации детергента или времени инкубации клеток в его растворе. Плотные ХТ содержат небольшое кол-во расправленного хроматина в виде одного или нескольких однонитчатых или олигонемных отростков, отходящих от "остаточного" ядра, к-рое состоит из конденсированного хроматина и по конфигурации, длине и ширине похоже на ядро лимфоцита. Рыхлые ХТ в 3-20 раз больше ядра интактного лимфоцита по длине и в 2-4 раза по ширине. Они состоят из разрыхленного хроматина, расположенного в их центральной части, расправленных хроматиновых фибрилл на их периферии и в отростках и случайно расположенных единичных удлиненных глыбок конденсированного хроматина. Рыхлые ХТ могут также содержать хромоцентр и(или) разное число поперечно исчерченных или спиралевидных структур веретеновидной формы длиной 2-5 мкм и максимальной шириной 1,5 мкм. Эти структуры обычно ассоциируют друг с другом латеральными или концевыми участками. ЯС представляют собой ХТ длиной 150-500 мкм, к-рые состоят из ассоциированных расправленных гладких и четковидных хроматиновых фибрилл. Четковидные фибриллы формируют пучки, а гладкие - ретикулярные структуры. Неассоциированные участки четковидных фибрилл ЯС могут быть локально расщеплены на две нити с одинаковым рисунком утолщений. Рисунок хроматина и форма ЯС, полученных из ядер лимфоцитов одной пробы донорской крови, а также относительное содержание в них ретикулярного хроматина варьирует в широких пределах. Отростки ХТ всех морфотипов могут содержать единичные четковидные фибриллы хроматина, к-рые соединены друг с другом или с ретикулярным хроматином. Описана изменчивость фибриллярной организации аргентофильной зоны ядрышка ХТ. Рассмотрены особенности существующих методов получения препаратов расправленного хроматина из ядер пролиферирующих клеток человека и животных и используемого метода их получения из ядер покоящихся клеток. Обсуждаются данные о влиянии фиксации кислотно-спиртовыми смесями и гипотонической обработки клеток на фибриллярную организацию хроматиновых структур и на межгенные расстояния в пределах одного хромосомного домена интерфазного ядра, а также данные о структурно-функциональной организации интерфазного хроматина культивируемых клеток. Россия, Ин-т цитологии РАН, С.-Петербург. Библ. 53

ГРНТИ	34.19.17

ВИНИТИ 341.19.17.09.07
Рубрики: ЯДРО
ХРОМАТИН
РАСПЛАВЛЕННЫЙ
СТРУКТУРА
МОРФОТИПЫ
ЯДРЫШКО
АРГЕНТОФИЛЬНАЯ ЗОНА
ЛИМФОЦИТЫ
ПЕРИФЕРИЧЕСКОЙ КРОВИ
ЧЕЛОВЕК

Доп.точки доступа:
Стефанова, В.Н.

РЖ ВИНИТИ 34 (BI05) 01.02-04И8.230

Оценка генотипа животных с помощью цитогенетики [Текст] / А. Ф. Яковлев [и др.] // Зоотехния. - 2000. - N 8. - С. 6-8 . - ISSN 0235-2478
Аннотация: Работа в области цитогенетики позволила выяснить закономерности синтеза ДНК в митотическом цикле клеток крупного рогатого скота, свиней и кур и дать заключение о крайне консервативном характере этого процесса, практически не позволяющем способствовать возникновению хромосомных аберраций

ГРНТИ	34.23.59

ВИНИТИ 341.23.59.02.13.02
Рубрики: СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫЕ ЖИВОТНЫЕ
ГЕНОТИП
МЕТОДЫ
ЦИТОГЕНЕТИКА

Доп.точки доступа:
Яковлев, А.Ф.; Никитин, Н.С.; Козикова, Л.В.; Стефанова, В.Н.; Киселева, Т.Ю.; Бавин, В.Г.; Прошин, С.Н.

РЖ ВИНИТИ 34 (BI49) 02.09-04Я6.62

Демин, С. Ю.
Структурная гетерогенность расплавленного хроматина интактных лейкоцитов человека и свиньи, выявляемая с помощью ДНК-специфических флуорохромов и гибридизации ДНК in situ в варианте с флуоресцентной меткой ДНК-зондов [Текст] : тез. докл. на 13-ом Всероссийском симпозиуме "Структура и функции клеточного ядра", Санкт-Петербург, 19-21 окт., 1999 / С. Ю. Демин, В. Н. Стефанова // Цитология. - 2000. - Т. 42, N 3. - С. 277 . - ISSN 0041-3771
Аннотация: Структуру хроматина изучали с помощью разработанного авт. одноэтапного метода получения препаратов безмембранных производных ядер интактных клеток человека и животных. Приводится подробное описание метода. Для выявления доменов отдельных хромосом на препаратах расправленного хроматина использовали биотинилированные ДНК-зонды, представлявшие собой тотальную ДНК Y-хромосомы свиньи и Х-хромосомы человека. В результате гибридизации ДНК на исследуемых препаратах с ДНК-зондами установлено, что они пригодны для выявления доменов отдельных хромосом и фибриллярной организации последних. Россия, Ин-т цитологии РАН, С.-Петербург

ГРНТИ	34.19.17

ВИНИТИ 341.19.17.09.07
Рубрики: ЯДРО
ХРОМАТИН
СТРУКТУРНАЯ ГЕТЕРОГЕННОСТЬ
ЛЕЙКОЦИТЫ
ГИБРИДИЗАЦИЯ ДНК
ДНК-ЗОНДЫ

Доп.точки доступа:
Стефанова, В.Н.

РЖ ВИНИТИ 34 (BI05) 04.05-04И8.157

Демин, С. Ю.
Структурно-функциональный полиморфизм Р-ДНК доменов в ядрах периферических лимфоцитов домашней свиньи [Текст] / С. Ю. Демин, В. Н. Стефанова // Актуальные проблемы генетики. - М., 2003. - Т.2. - С. 277-279 . - ISBN 5-94327-165-1
Аннотация: Удалось показать гетероморфизм доменов рДНК гомологичных хромосом и оценить размеры внутриядрышковых доменов рДНК индивидуальных хромосом. Оказалось, что рДНК домены негомологичных ЯО-хромосом свиньи почти вдвое отличались по максимальному числу выявляемых в них 0.4 мкм бусин (40-50 против 20-30)

ГРНТИ	34.23.59

ВИНИТИ 341.23.59.02.07
Рубрики: РДНК
СТРУКТУРА
ЛИМФОЦИТЫ
СВИНЬИ

Доп.точки доступа:
Стефанова, В.Н.

РЖ ВИНИТИ 34 (BI05) 04.05-04И8.172

Стефанова, В. Н.
Характеристика линеаризированных ЯОР интерфазных хромосом, выявляемых на препаратах растянутых клеток эмбриональной почки домашней свиньи [Текст] : тез.[1 Съезд Общества клеточной биологии, Санкт-Петербург, 14-16 окт.,2003] / В. Н. Стефанова, С. Ю. Демин // Цитология. - 2003. - Т. 45, N 9. - С. 933 . - ISSN 0041-3771
Аннотация: Изучать интерфазную организацию ядрышкообразующих районов (ЯОР) индивидуальных хромосом удобнее всего у таких видов млекопитающих, в кариотипе которых содержится небольшое число хромосом с ЯОР. Настоящая работа проведена на клеточной линии СПЭВ, полученной из эмбриональной почки домашней свиньи, в кариотипе которой всего две пары ядрышкообразующих (ЯО) хромосом. При этом для 8-й пары ЯО-хромосом наблюдается заметный гетероморфизм по размеру аргентофильной зоны на гомологах. Данные FISH позволяют интерпретировать выявляемые структуры как линеаризованные ЯОР интерфазных хромосом. Число линеаризированных структур на ядро варьировало от 1 до 3. Детальный кариотипический и морфометрический анализ позволил установить 4 характерных паттерна этих структур, которые, без сомнения, соответствуют ЯОР 8-й и 10-й хромосом. По результатам хромосомной идентификации ЯОР 8-й хромосомы с амплификацией аргентофильной зоны состоит максимально из 15-17 хромомеров, ЯОР 8-й хромосомы без амплификации - из 12 хромомеров, ЯОР 10-й хромосомы - из 10 хромомеров. Обнаружены два типа паттернов аргентофильной зоны 10-й хромосомы. Такого рода гетероморфизм хромосомы 10 может быть результатом эпигенетической изменчивости хромосом

ГРНТИ	34.23.59

ВИНИТИ 341.23.59.02.13.05
Рубрики: ЯДРЫШКОВЫЙ ОРГАНИЗАТОР
СТРУКТУРА
ИНТЕРФАЗНЫЕ ХРОМОСОМЫ
СВИНЬИ

Доп.точки доступа:
Демин, С.Ю.

РЖ ВИНИТИ 34 (BI49) 04.05-04Я6.117

Стефанова, В. Н.
Характеристика линеаризированных ЯОР интерфазных хромосом, выявляемых на препаратах растянутых клеток эмбриональной почки домашней свиньи [Текст] : тез.[1 Съезд Общества клеточной биологии, Санкт-Петербург, 14-16 окт.,2003] / В. Н. Стефанова, С. Ю. Демин // Цитология. - 2003. - Т. 45, N 9. - С. 933 . - ISSN 0041-3771
Аннотация: Изучать интерфазную организацию ядрышкообразующих районов (ЯОР) индивидуальных хромосом удобнее всего у таких видов млекопитающих, в кариотипе которых содержится небольшое число хромосом с ЯОР. Настоящая работа проведена на клеточной линии СПЭВ, полученной из эмбриональной почки домашней свиньи, в кариотипе которой всего две пары ядрышкообразующих (ЯО) хромосом. При этом для 8-й пары ЯО-хромосом наблюдается заметный гетероморфизм по размеру аргентофильной зоны на гомологах. Данные FISH позволяют интерпретировать выявляемые структуры как линеаризованные ЯОР интерфазных хромосом. Число линеаризированных структур на ядро варьировало от 1 до 3. Детальный кариотипический и морфометрический анализ позволил установить 4 характерных паттерна этих структур, которые, без сомнения, соответствуют ЯОР 8-й и 10-й хромосом. По результатам хромосомной идентификации ЯОР 8-й хромосомы с амплификацией аргентофильной зоны состоит максимально из 15-17 хромомеров, ЯОР 8-й хромосомы без амплификации - из 12 хромомеров, ЯОР 10-й хромосомы - из 10 хромомеров. Обнаружены два типа паттернов аргентофильной зоны 10-й хромосомы. Такого рода гетероморфизм хромосомы 10 может быть результатом эпигенетической изменчивости хромосом

ГРНТИ	34.19.19

ВИНИТИ 341.19.19.11.03.03
Рубрики: ЯДРЫШКОВЫЙ ОРГАНИЗАТОР
СТРУКТУРА
ИНТЕРФАЗНЫЕ ХРОМОСОМЫ
СВИНЬИ

Доп.точки доступа:
Демин, С.Ю.

РЖ ВИНИТИ 34 (BI05) 05.08-04И8.118

Стефанова, В. Н.
Структурно-функциональная характеристика хроматина, выделенного из замороженной спермы хряков [Текст] : докл.[Международная конференция "Сохранение генетических ресурсов", Санкт-Петербург, 19-22 окт., 2004] / В. Н. Стефанова // Цитология. - 2004. - Т. 46, N 10. - С. 864-865 . - ISSN 0041-3771
Аннотация: Сперматозоид млекопитающих представляет собой особый тип клетки, в которой геномная ДНК плотно упакована с образованием нуклеопротаминового комплекса. Использование метода гибридизации in situ (FISH-вариант) с центромерными, теломерными и хромосом-специфичными ДНК-пробами показало, что существует пространственная организация ДНК в ядрах сперматозоидов человека. Принимая во внимание очень плотную компактизацию хроматина сперматозоидов, их ядра необходимо деконденсировать перед проведением процедуры гибридизации in situ, чтобы обеспечить доступность хроматина для ДНК-проб. Обычно для этого используются достаточно жесткие химические обработки сперматозоидов, вызывающие набухание их ядер и, несомненно, нарушающие нативную структуру хроматина. Задача - отработать метод выделения хроматина из сперматозоидов после мягкой обработки неионным детергентом Тритоном X-100; охарактеризовать морфологию т. наз. хроматиновых тел и сопоставить их с рабленовыми хроматиновыми структурами, получаемых из коллоидных ядер. Выделили несколько основных структурных типов хроматиновых тел: плотные единичные хроматиновые тела (диаметром 8-14 мкм); плотные хроматиновые тела, состоящие из нескольких отдельно расположенных доменов, соединенных фибриллами; диффузные хроматиновые тела диаметром 10-20 мкм, состоящие из сети фибрилл разной плотности, и хроматиновые фибриллы длиной 20-30 мкм. С увеличением конц-ии и времени обработки детергентом частота встречаемости диффузных хроматиновых тел и хроматиновых фибрилл возрастает (для каждого режима обработки подсчитывали по 500 хроматиновых тел). Авт. предполагают, что выявляемые хроматиновые структуры отражают последовательные стадии расплавления хроматина сперматозоидов. Хроматиновые структуры, состоящие из нескольких соединенных доменов, могут свидетельствовать о существовании истинных доменов компактизации хроматина сперматозоидов или быть следствием процедуры замораживания-размораживания. Проводили сопоставление структуры, морфологии и степени компактизации хроматиновых тел, получаемых из сперматозоидов хряков, и аналогичных структур, получаемых из лимфоцитов хряков. Полученные авт. хроматиновые структуры могут быть успешно использованы в опытах по изучению архитектоники гаплоидного ядра млекопитающих с помощью FISH

ГРНТИ	34.39.57

ВИНИТИ 341.39.57.87.17.29
Рубрики: СПЕРМА
КРИОКОНСЕРВАЦИЯ
ХРОМАТИН
СВИНЬИ

РЖ ВИНИТИ 34 (BI05) 06.04-04И8.112

Автоматический анализ кариотипа свиньи: создание и апробация оригинальной компьютерной версии [Текст] / В. Н. Стефанова [и др.] // Материалы Конференции, посвященной 100-летию научной селекции в России, Москва, 9-11 дек., 2003. - М., 2003. - С. 161-162
Аннотация: Предлагаемая программа автоматического кариотипирования свиньи может быть использована в свиноводстве для цитогенетического контроля производителей и в медицинских исследованиях для кариотипирования многочисленных клеточных линий свиньи, используемых в качестве модельных объектов

ГРНТИ	34.23.59

ВИНИТИ 341.23.59.02.13.05
Рубрики: МЕТОДЫ
КАРИОТИПЫ
ОПРЕДЕЛЕНИЕ
АВТОМАТИЧЕСКИЙ АНАЛИЗ
КОМПЬЮТЕРНЫЕ ПРОГРАММЫ
СВИНЬИ

Доп.точки доступа:
Стефанова, В.Н.; Клыкова, Е.И.; Зенина, М.Н.; Петренко, И.В.

10.

РЖ ВИНИТИ 34 (BI08) 06.10-04Я6.52

Стефанова, В. Н.
Передача рибосомного хроматина в митозе клеток эмбриональной почки свиньи (линия СПЭВ) [Текст] / В. Н. Стефанова, С. Ю. Демин // Цитология. - 2006. - Т. 48, N 3. - С. 226-239 . - ISSN 0041-3771
Аннотация: Ядрышковые организаторы (ЯОР) млекопитающих содержат гены рРНК, ассоциированные с аргентофильными белками, и могут быть специфично окрашены серебром. Эти гены формируют кластеры в четырех локусах мета- и субметацентрических хромосом 8-й и 10-й пар в кариотипе линии СПЭВ. Согласно ранее опубликованным данным, ЯОР гомолога 8а хромосомы 8 содержит амплификацию рДНК, к-рая после серебрения хромосом проявляется как аномально большой Ag{+}-ЯОР. Изучали влияние такой избыточной рДНК на содержание Ag-негативного рибосомного хроматина в кариотипе. Проведен морфометрический анализ Ag{+}-ЯОР хромосом из прометафазных пластинок с модальным числом хромосом. Обнаружено, что в индивидуальном наборе более длинный гомолог 10[L] хромосомы 10 всегда содержит более крупный Ag{+}-ЯОР, чем более короткий гомолог 10[S]. Таким образом, кариотип СПЭВ содержит две пары гетероморфных ЯОР: 8а и 8, 10[L] и 10[S]. Половина проанализированных наборов хромосом содержала четыре Ag{+}-ЯОР, другая половина имела один Ag-негативный ЯОР, который со сходной частотой принадлежал либо хромосоме 8, либо 10[S]. Большая часть прометафазных Ag{+}-ЯОР была частично или полностью расщеплена на хроматиды, что позволило измерить площадь Ag{+}-ЯОР (сестринских) хроматид. Отношение площадей большего к меньшему Ag{+}-ЯОР хроматиды сильно варьировало для всех хромосом набора, за исключением 8а. Максимальное значение этого отношения достигало 5.1 для хромосомы 8, 3.4 и 2.3 - для 10[L] и 10[S] (против 1.6 для 8а). Хромосом с отношением, равным 1725 и выше, было найдено среди хромосом: 8а - менее четверти, 10[L] и 10[S] - около половины, 8 - более двух третей. Эти данные указывают на то, что прогрессивная дифференциация сестринских хроматид по содержанию Ag-негативно рибосомного хроматина может привести к неравному распределению Ag{+}-ЯОР между дочерними клетками. Проверка этого предположения была осуществлена на двухмерных (2D) препаратах растянутых клеток СПЭВ, полученных без гипотонической обработки живых клеток, которая приводит к одинаковому уровню серебрения ЯОР и "проядрышек" в раннетелофазных фиксированных клетках. Обнаружено, что для некоторых дочерних ядер таких клеток характерно расщепление Ag{+}-ЯОР, равное 4:3 вместо обычного 4:4. Комплементарные данные были получены методом 2D FISH с пробой 28S + 18S рДНК норки. Показано, что раннетелофазные локусы рДНК выявляются в виде четырех ярко флуоресцирующих пятен, которые по своим размерам и форме близки Ag{+}-ЯОР соответствующих клеток. В которых случаях, однако, одно из дочерних ядер содержало три таких домена и один тусклый линейный FISH-сигнал, к-рый, по-видимому, представлял собой несеребрящийся ЯОР. Установлено, что Ag{+}-ЯОР хромосомы 8а, самому крупному в кариотипе СПЭВ, присущ высокий уровень когезии и (или) скрученности сестринских хроматид, что характерно для профазных, но не прометафазных хромосом данной линии клеток. Эти наблюдения и литературные данные, приведенные в статье, свидетельствуют об обогащенности Ag{+}-ЯОР хромосомы 8а неактивным и (или) малоактивным позднореплицирующимся хроматином. Россия, Всероссийский НИИ генетики и разведения сельскохозяйственных животных РАСХН, Санкт-Петербург - Пушкин, vestefan@mail.ru. Библ. 79

ГРНТИ	34.19.17

ВИНИТИ 341.19.17.09.07 + 341.19.19.11.03.05
Рубрики: ХРОМАТИН
РИБОСОМНЫЙ
ПЕРЕДАЧА
ГЕТЕРОХРОМАТИН
ЯДРЫШКОВЫЙ ОРГАНИЗАТОР
РАСПРЕДЕЛЕНИЕ РДНК
МИТОЗ
ФАЗЫ
ЛИНИЯ КЛЕТОК СПЭВ
СВИНЬИ

Доп.точки доступа:
Демин, С.Ю.

11.

РЖ ВИНИТИ 34 (BI08) 06.10-04Я6.53

Демин, С. Ю.
Дифференциация интерфазных ядрышковых организаторов в клетках эмбриональной почки свиньи (линия СПЭВ) [Текст] / С. Ю. Демин, В. Н. Стефанова // Цитология. - 2006. - Т. 48, N 4. - С. 320-331 . - ISSN 0041-3771
Аннотация: Прометафазный кариотип линии СПЭВ содержит две гетероморфные пары ядрышковых организаторов, принадлежащих хромосомам 8а и 8, 10[L] и 10[S]. Явлением гетероморфизма воспользовались для хромосомной дифференциации интерфазных ядрышковых организаторов (ИЯО). Исследовали двухмерные (2D) препараты фиксированных метанолом клеток СПЭВ, растянутых на поверхности предметного стекла без применения гипотонии. Значительная часть интерфазных клеток на 2D-препаратах содержала 3-4 структуры линейной конфигурации, расположенные в доменах ядрышек. Эти структуры были позитивными при наблюдении методом фазового контраста и после окрашивания DAPI. С помощью рДКН-FISH было установлено, что они представляют собой ИЯО. Самый крупный из ИЯО индивидуальной клетки обычно содержал яркий терминальный сигнал рДНК-FISH/DAPI-окрашивания, что указывает на его принадлежность хромосоме 8а. Известно, что в р-ции серебрения ядрышек на мазках периферических лимфоцитов человека, осуществленной после фиксации метанолом, участвуют в основном белки фибриллярных центров. Показано, что такая же специфичность серебрения ядрышек скорее всего характерна и для 2D-препаратов клеток СПЭВ, фиксированных метанолом. Как посеребренные, так и окрашенные методом рДНК-FISH, ИЯО имели либо четковидную, либо дискоидальную структуру разной степени разрешения. Дискоидальные ИЯО состояли из поперечных аргентофильных структур - плотных дисков и рыхлых междисков. В высокоразрешенных дискоидальных ИЯО наблюдали продольное расщепление (двунитчатость) зоны междисков. Четковидные ИЯО состояли из аргентофильных бусин, которые были примерно вдвое уже аргентофильных дисков, и однонитчатой или Ag-негативной зоны между бусинами. Среди ИЯО с высоким разрешением структуры были найдены четыре воспроизводимых паттерна серебрения, которые можно объединить в две гомологичные группы. Поскольку каждый из таких паттернов был к тому же уникальным для индивидуальной клетки, сделано заключение о том, что они являются хромосомоспецифичными. С использованием данных прометафазного анализа была определена хромосомная принадлежность ИЯО воспроизводимых паттернов серебрения. ИЯО, принадлежащие разным хромосомам, были сопоставлены между собой по средней длине и среднему числу аргентофильных бусин, а также по отношению длин и отношению числа аргентофильных бусин, рассчитанным для разных пар ИЯО индивидуальной клетки. Оба отношения, определенные для наиболее гетероморфной пары гомологичных хромосом 8а и 8, составляли лишь 1.26'+-'0.02. Для сравнения: аналогичное 8а/8 отношение длин ядрышковых организаторов, рассчитанное для индивидуальных прометафазных клеток, было равно 2.92'+-'0.30. Россия [В. Н. С.], Ин-т цитологии РАН, Санкт-Петербург, vestefan@mail.ru. Библ. 39

ГРНТИ	34.19.17

ВИНИТИ 341.19.17.09.07
Рубрики: ХРОМАТИН
РИБОСОМНЫЙ
ГЕТЕРОХРОМАТИНИЗАЦИЯ
ХРОМОСОМЫ
ЯДРЫШКО
ЯДРЫШКОВЫЕ ОРГАНИЗАТОРЫ
ИНТЕРФАЗА
ЛИНИЯ КЛЕТОК СПЭВ
СВИНЬИ

Доп.точки доступа:
Стефанова, В.Н.

12.

РЖ ВИНИТИ 34 (BI08) 07.09-04Я6.105

Стефанова, В. Н.
Изучение структурных изменений хромосом клеток линии СПЭВ, вызываемых деконденсирующими агентами [Текст] : тез. [Всероссийский симпозиум "Биология клетки в культуре", Санкт-Петеpбург, 17-19 окт., 2006] / В. Н. Стефанова // Цитология. - 2006. - Т. 48, N 9. - С. 802-803 . - ISSN 0041-3771
Аннотация: Для изучения структурных изменений хромосом под воздействием неинтеркалирующих агентов, специфичных к АТ-парам ДНК, были использованы клетки линии СПЭВ, произошедшие из эмбриональной почки свиньи. В этой линии клеток прицентромерный гетерохроматин акроцентрических хромосом обогащен АТ-парами оснований, а суб- и метацентрических хромосом - как АТ- так и ГЦ-парами. В качестве агентов, вызывающих задержку конденсации определенных районов хромосом, были опробованы Хехст 33258, дистамицин А и ДАФИ. В ходе экспериментов было установлено, что структурные изменения хромосом, вызываемые этими агентами, зависят от концентрации и времени воздействия вещества. Несмотря на сходный механизм взаимодействия с ДНК и слабый мутагенный эффект, отмеченный у всех использованных агентов, вызываемые ими структурные изменения хромосом были специфичными и проявлялись в виде наличии межхромосомных связей между акроцентрическими хромосомами (ДАФИ), задержки конденсации прицентромерных и теломерных районов хромосом (Хехст 33 258) и задержки конденсации прицентромерных районов акроцентрических хромосом с одновременным проявлением в них C-дисков. Обсуждаются механизмы задержки конденсации определенных районов хромосом. Полученные данные сопоставляются с результатами работ по воздействию деконденсирующих веществ на хромосомы других объектов. Россия, ВНИИ разведения и генетики сельскохозяйственных животных РАСХН

ГРНТИ	34.19.19

ВИНИТИ 341.19.19.11.03.09
Рубрики: ХРОМОСОМЫ
ИЗМЕНЕНИЕ
ИНТЕРКАЛИРУЮЩИЕ АГЕНТЫ
КУЛЬТУРЫ КЛЕТОК
ЭМБРИОНАЛЬНЫЕ ПОЧКИ СВИНЬИ

13.

РЖ ВИНИТИ 34 (BI05) 07.10-04И8.118

Стефанова, В. Н.
Маркирование генома свиньи с помощью микродиссекции хромосом [Текст] / В. Н. Стефанова // Вестн. Рос. акад. с.-х. наук. - 2007. - N 1. - С. 61-62 . - ISSN 0869-3730
Аннотация: Микродиссекцией с последующей ПЦР амплификации получены ДНК-пробы Y-хромосомы свиньи и ядрышкообразующего района хромосом 10-й пары. Подтверждена эффективность использования полученных ДНК-проб в опытах по гибридизации ДНК-ДНК in situ на митотических хромосомах, растянутом хроматине интерфазных ядер и сперматозоидах свиньи. Обсуждается область применения этих проб для маркирования генома свиньи. Россия, ВНИИ разведения и генетики сельскохозяйственных животных. Библ. 6

ГРНТИ	34.23.59

ВИНИТИ 341.23.59.02.05
Рубрики: МЕТОДЫ
МАРКИРОВАНИЕ ГЕНОМА
МИКРОДИССЕКЦИЯ ХРОМОСОМ
ПЦР-АМПЛИФИКАЦИЯ
Y-ХРОМОСОМА
ХРОМОСОМА 10
СВИНЬИ

14.

РЖ ВИНИТИ 34 (BI05) 90.06-04И8.317

Россоха, В. И.
Анализ хромосомной нестабильности у свиней [Текст] / В. И. Россоха, Л. И. Ефименко, В. Н. Стефанова // Цитогенет. и биотехнол. - Л., 1989. - С. 77-79
Аннотация: Исследовали спонтанные аберрации хромосом в лейкоцитах периферической крови свиней пород крупная белая и ландрас племзавода "Украинка". Установлено варьирование хромосомной нестабильности лейкоцитов свиней в широких пределах от 0 до 32,1%, что в основном, обусловлено индивидуальными особенностями животных. Уровень спонтанного хромосомного мутирования составил у хряков в среднем 2,3'+-'0,18%, а у свиноматок 5,0'+-'0,83%. Свиньи крупной белой породы (n=14) имели уровень спонтанных хромосомных мутаций 10% (в среднем 1,85%) и лишь у свиноматки уровень хромосомной нестабильности составил 23,5%. У свиней породы ландрас 16 особей имели уровень спонтанных хромосомный мутаций 10% (в среднем 2,21%), а у 4 особей уровень был 10%, соотв. у хряков - 30,4% и 32,1%, а у свиноматок - 18 и 32,1%. Спектр спонтанных хромосомный мутаций представлен числовыми и структурными аберрациями в след. соотношении: полиплоидия - 24%, анеуплоидия - 13,1%, хромосомные и хроматидные делеции - 33,3%, гепы - 11%, транслокации, хроматидные обмены - 18,6%. Проведен анализ воспроизводительных качеств 5 хряков и 10 свиноматок в связи с уровнем хромосомной нестабильности. У 3 свиноматок породы крупная белая (средний уровень хромосомной нестабильности - 25%), средний показатель многоплодия по последним опросам составил 11 голов. У свиноматок с уровнем хромосомной нестабильности 23,5% (крупная белая) и 32,1% (ландрас) в последних опоросах в помете было соотв. 3 и 4 живорожденных поросенка.

ГРНТИ	34.23.59

ВИНИТИ 341.23.59.02.13
Рубрики: ХРОМОСОМЫ
СВИНЬИ
КРУПНАЯ БЕЛАЯ ПОРОДА
ЛАНДРАС ПОРОДА
НЕСТАБИЛЬНОСТЬ
АБЕРРАЦИИ
ВОСПРОИЗВОДИТЕЛЬНАЯ СПОСОБНОСТЬ

Доп.точки доступа:
Ефименко, Л.И.; Стефанова, В.Н.

15.

РЖ ВИНИТИ 34 (BI05) 90.11-04И8.343

Ефименко, Л. И.
Анализ уровня хромосомных нарушений у хряков в связи с их воспроизводительными качествами [Текст] / Л. И. Ефименко, В. Н. Стефанова // Бюл. ВНИИ развед. и генет. с.-х. животных. - 1989. - N 112. - С. 6-14 . - ISSN 0156-1996
Аннотация: Определяли уровень спонтанных хромосомных нарушений, а также вклад структурных и количественных нарушений хромосом в общий фон спонтанных аберраций, изучали межиндивидуальную и межпородную изменчивость этого показателя, его стабильность во времени. Исследование выполнено на 30 хряках породы крупная белая и 13 хряках породы ландрас. Материалом исследования служили лимфоциты периферической крови. Воспроизводительные качества хряков оценивали по двум показателям: фертильности (оплодотворяющей способности) и многоплодию осемененных ими свиноматок. Частота спонтанных хромосомных аберраций для всех проанализированных животных составило в среднем 12,6'+-'1,0. Преобладали количественные нарушения хромосом, на долю к-рых приходилось 68,7% аберраций, из них 40% нарушений представляли собой анеуплоидные клетки, 28,7% - полиплоидные. Отмечены широкие межиндивидуальные различия по соотношению структурных и количественных аберраций хромосом. В среднем частота спонтанных хромосомных аберраций у хряков крупной белой породы составила 10,6'+-'1,0%, а у хряков породы ландрас - 17,0'+-'1,0%. Средняя фертильность у хряков породы ландрас составила 86,7'+-'4,9%, а среднее многоплодие - 9,5'+-'0,33 головы. Библ. 16.

ГРНТИ	34.23.59

ВИНИТИ 341.23.59.02.13
Рубрики: ХРОМОСОМЫ
ЧАСТОТА СПОНТАННЫХ АБЕРРАЦИЙ
СВИНЬИ
КРУПНАЯ БЕЛАЯ ПОРОДА
ЛАНДРАС ПОРОДА
ВОСПРОИЗВОДИТЕЛЬНАЯ СПОСОБНОСТЬ

Доп.точки доступа:
Стефанова, В.Н.

16.

РЖ ВИНИТИ 34 (BI05) 90.12-04И8.252

Стефанова, В. Н.
Ядрышкообразующие районы хромосом в профазе мейоза у коров [Текст] / В. Н. Стефанова, Л. Д. Галиева, Б. Е. Свиридов // Изв. СО АН СССР. сер. биол. н. - 1990. - N 2. - С. 21 . - ISSN 0568-6547
Аннотация: Изучали активность ядрышкообразующих районов хромосом КРС в профазе мейоза. Ядра оогониев по сравнению с клетками фолликулярного эпителия быди значительно крупнее и содержали от 4 до 5 разнообразных по размеру и форме ядрышек. В прелептотене наблюдали от 3 до 9 окрашенных серебром ядрышей (в среднем 5,8'+-'1,0). В лептотене число ядрышек варьировало от 3 до 5 (в среднем 3,9'+-'0,4), а в зиготене отмечали от 2 до 5 крупных ядрышек (в среднем 4,3'+-'0,5). Ооциты в пахитене имели в среднем 6,0'+-'0,8 ядрышек, а в диплотене их число снижалось и в среднем составляло 3,8'+-'1,1. Кроме окрашивающих серебром крупных ядрышек в профазе оогенеза у коров наблюдали мелкие окрашивающиеся серебром тельца, число к-рых в прелептотене достигало 11, в лептотене их число варьировало в одних клетках от 2 до 9, а в других они вообще не наблюдались. В зиготене эти мелкие тельца отсутствовали. Т. обр., на протяжении профазы оогенеза КРС наблюдается высокая транскрипционная активность ядрышкообразующих районов в ооцитах, синтезирующих рРНК, к-рая используется как самим ооцитом в процессе его роста, так и на ранних стадиях зародыша.

ГРНТИ	34.23.59

ВИНИТИ 341.23.59.02.13
Рубрики: ХРОМОСОМЫ
КРС
МЕЙОЗ
ЯДРЫШКООБРАЗУЮЩИЕ РАЙОНЫ
ТРАНСКРИПЦИОННАЯ АКТИВНОСТЬ
ООЦИТЫ

Доп.точки доступа:
Галиева, Л.Д.; Свиридов, Б.Е.

17.

РЖ ВИНИТИ 34 (BI05) 91.01-04И8.369

Получение и исследование цитогенетически маркированных радиомутантов свиней [Текст] / И. Л. Гольдман [и др.] // Вестн. с. х. науки. - 1990. - N 9. - С. 137-142 . - ISSN 0206-6335
Аннотация: Впервые в СССР получены кариологически маркированные радиомутанты свиней. После осеменения свиноматок, облученных в дозе 7,1 Гр., спермой хряков среди 38 родившихся поросят выявлены хрячок N19 с транслокацией хромосом 6q+, 13q - и свинка N22 с транслокациями хромосом 1р-, 7р+; 15q-, 12q+. Радиомутантов использовали в модельных экспериментах для изучения влияния аберраций хромосом на воспроизводительную функцию животных. Библ. 16.

ГРНТИ	34.23.59

ВИНИТИ 341.23.59.02.13
Рубрики: ЦИТОГЕНЕТИКА
ТРАНСЛОКАЦИИ ХРОМОСОМ
СВИНЬИ
РАДИОМУТАНТЫ
МАРКЕРЫ
ВОСПРОИЗВОДИТЕЛЬНАЯ СПОСОБНОСТЬ

Доп.точки доступа:
Гольдман, И.Л.; Смирнов, О.К.; Коновалов, М.А.; Стефанова, В.Н.; Джапаридзе, С.Т.; Чичерина, И.И.; Кленовицкий, П.М.

18.

РЖ ВИНИТИ 34 (BI05) 15.08-04И8.91

Стефанова, В. Н.
Классификатор автоматического распознавания хромосом свиньи домашней (Sus scrofa domesticus) [Текст] / В. Н. Стефанова, М. Н. Зенина // Цитология. - 2014. - Т. 56, N 10. - С. 779-784 . - ISSN 0041-3771
Аннотация: Необходимость проведения цитогенетического мониторинга в свиноводстве и выбраковки животных с хромосомными аберрациями из селекционного процесса ставит задачу автоматизации кариотипирования с помощью специального программного обеспечения, аналогичного существующего для хромосом человека. Разработан автоматический классификатор хромосом свиньи на базе программного обеспечения "Карио-3.1". Первоначально в состав классификатора были включены 1578 хромосом из 47 метафазных пластинок. Проверка работы классификатора показала, что частота ошибочного распознавания хромосом составляет 8,2%, или 3,12'+-'0,26 ошибки на метафазу. Дополнение классификатора до 1807 хромосом позволило снизить частоту ошибки до 6,1% или 2,78'+-'0,18 ошибки на метафазу. Апробация классификатора на хряке с реципрокной транслокацией rcp(1p-; 11p+) продемонстрировала корректную классификацию всех хромосом в наборе. Сфера применения классификатора хромосом свиньи обсуждается

ГРНТИ	34.23.59

ВИНИТИ 341.23.59.02.13.02
Рубрики: ХРОМОСОМЫ
ХРОМОСОМНЫЕ АБЕРРАЦИИ
АВТОМАТИЧЕСКИЙ КЛАССИФИКАТОР
СВИНЬИ

Доп.точки доступа:
Зенина, М.Н.

"Электронные каталоги и базы данных библиотек СО РАН"

© Международная Ассоциация пользователей и разработчиков электронных библиотек и новых информационных технологий
(Ассоциация ЭБНИТ)

rtvarBDview(" результаты поиска","20190607010228","4682442");

Вид поиска