СибНСХБ

Вид поиска

Область поиска

Найдено в других БД

Формат представления найденных документов:
библиографическое описание	краткий	полный

Отсортировать найденные документы по:
автору	заглавию	году издания	типу документа

Поисковый запрос: (<.>A=Шуколюков, С. А.$<.>)

Общее количество найденных документов : 16
Показаны документы с 1 по 16

РЖ ВИНИТИ 34 (BI17) 98.11-04И1.17

Шуколюков, С. А.
Транс-цис изомеризация хромофора зрительных пигментов у позвоночных и беспозвоночных: три способа решения проблемы [Текст] / С. А. Шуколюков // Сенсор. системы. - 1997. - Т. 11, N 3. - С. 294-299 . - ISSN 0235-0092
Аннотация: Образование 11-cis ретиноидов в глазу представляет собой кинетически неблагоприятный процесс, так как превращение trans изомера в 11-cis изомер требует энергии. Источником энергии в зрительном цикле служат свет или ацилфосфатная макроэргическая связь ретиниловых эфиров. Обсуждаются три типа механизмов, обеспечивающих trans-cis изомеризацию хромофора зрительных пигментов позвоночных и беспозвоночных. Первый механизм основывается на фотоизомеризации альдегидной формы хромофора, когда последний все еще связан с апопротеином в метародопсине (все беспозвоночные). Второй механизм включает в себя фотоизомеризацию альдегидной формы хромофора, к-рый находится в дополнительном белке-катализаторе: мембранно-связанном ретинохроме (головоногие и брюхоногие моллюски), водорастворимый ретинальфотоизомеразе (пчела, мясная муха, мечехвост). Эти два белка после завершения фотоизомеризации выполняют роль донора 11-cis формы хромофора. Третий механизм основывается на светонезависимой изомеризации предшественника хромофора, all-trans ретинилового эфира, в другой предшественник, 11-cis ретинол, с помощью специфической синтетазно-изомеразной ферментной системы (бык, лягушка, омар, речной рак). Россия, Ин-т эволюционной физиологии, биохимии им. И. М. Сеченова, РАН, С.-Петербург. Библ. 20

ГРНТИ	34.33.02

ВИНИТИ 341.33.02.29
Рубрики: РЕТИНОИДЫ
КИНЕТИКА ОБРАЗОВАНИЯ
ПОЗВОНОЧНЫЕ

РЖ ВИНИТИ 34 (BI24) 99.02-04М3.238

Шуколюков, С. А.
Фототрансдукция у Drosophila: кальциевые каналы, сигнальные комплексы и рецепторы инозитолтрифосфата [Текст] / С. А. Шуколюков // Сенсор. системы. - 1998. - Т. 12, N 3. - С. 255-262 . - ISSN 0235-0092
Аннотация: Обсуждаются новые данные по фототрансдукции Drosophila, затрагивающие такие проблемы, как TRP- и TRPL-каналы, гомеостаз Ca{2+}, организация INAC, NORPA и TRP с помощью INAD в мультибелковый сигнальный комплекс благодаря соотв. PDZ-доменам в нем, а также роль IP[3]-рецепторов в фототрансдукции, дифференцировке и пролиферации клеток. Приводятся данные, показывающие, что IP[3]-рецептор не участвует в акте фототрансдукции. По-видимому, фосфоинозитидная модель фототрансдукции Drosophila, включающая в себя в качестве непременного этапа взаимодействие IP[3] со своим рецептором и, как результат освобождения Ca{2+} из внутриклеточных депо, должна быть пересмотрена

ГРНТИ	34.39.19

ВИНИТИ 341.39.19.09.11
Рубрики: ФОТОРЕЦЕПТОРЫ
ТРАНСДУКЦИЯ
КАЛЬЦИЕВЫЕ КАНАЛЫ
РЕЦЕПТОРЫ ИНОЗИТТРИФОСФАТА
ДРОЗОФИЛЫ

РЖ ВИНИТИ 34 (BI50) 99.03-04И3.179

Шуколюков, С. А.
Фототрансдукция у Drosophila: кальциевые каналы, сигнальные комплексы и рецепторы инозитолтрифосфата [Текст] / С. А. Шуколюков // Сенсор. системы. - 1998. - Т. 12, N 3. - С. 255-262 . - ISSN 0235-0092
Аннотация: Обсуждаются новые данные по фототрансдукции Drosophila, затрагивающие такие проблемы, как TRP- и TRPL-каналы, гомеостаз Ca{2+}, организация INAC, NORPA и TRP с помощью INAD в мультибелковый сигнальный комплекс благодаря соотв. PDZ-доменам в нем, а также роль IP[3]-рецепторов в фототрансдукции, дифференцировке и пролиферации клеток. Приводятся данные, показывающие, что IP[3]-рецептор не участвует в акте фототрансдукции. По-видимому, фосфоинозитидная модель фототрансдукции Drosophila, включающая в себя в качестве непременного этапа взаимодействие IP[3] со своим рецептором и, как результат освобождения Ca{2+} из внутриклеточных депо, должна быть пересмотрена

ГРНТИ	34.33.19

ВИНИТИ 341.33.19.45.09.13.07.09
Рубрики: ФОТОРЕЦЕПТОРЫ
ТРАНСДУКЦИЯ
КАЛЬЦИЕВЫЕ КАНАЛЫ
РЕЦЕПТОРЫ ИНОЗИТТРИФОСФАТА
ДРОЗОФИЛЫ

РЖ ВИНИТИ 34 (BI24) 00.09-04М3.267

Шуколюков, С. А.
Ключевые реакции зрительного цикла позвоночных и беспозвоночных: активация и регенерация родопсина [Текст] / С. А. Шуколюков // Ж. эволюц. биохимии и физиол. - 1999. - Т. 35, N 6. - С. 441-452 . - ISSN 0044-4529
Аннотация: Обобщены и проанализированы данные литературы, затрагивающие механизмы активации (деактивации) и регенерации зрительных пигментов (ЗП) у позвоночных (млекопитающие) и беспозвоночных (головоногие моллюски, насекомые, ракообразные). Активационный путь ЗП включает в себя цис-транс-фотоизомеризацию хромофора (Хр) и взаимодействие активированного фотопродукта - метародопсина II (позвоночные) или метародопсина (беспозвоночные) с G-белком. Гашение активности метародопсина II у позвоночных (стадия дезактивации) обеспечивается до конца не расшифрованным взаимодействием метародопсина II с метародопсинкиназой, арестином, Ca{2+}, S-модулином, ретиноидоксидоредуктазой (РОР) и фосфатазой 2А. Активационный (деактивационный) путь родопсина насекомых имеет ряд отличительных особенностей: 1) метародопсин относительно стабилен, но может менять свою термостабильность и эффективность активации G-белка; 2) связывание арестина метародопсином предшествует фосфорилированию последнего метародопсинкиназой; 3) арестин контролирует как фосфорилирование, так и дефосфорилирование метародопсина. Регенерационный путь родопсина позвоночных представлен следующими термальными реакциями: дефосфорилированием метародопсина II фосфатазой 2А, восстановлением полностью-транс-ретиналя (т. е. all-trans-retinal) в полностью-транс-ретинол с помощью РОР, транспортом полностью-транс-ретинола в пигментный эпителий (ПЭ), его эстерификацией до полностью-транс-ретиниловых эфиров, превращением последних в 11-цис-ретинол, окислением 11-цис-ретинола в 11-цис-ретиналь и транспортом последнего из ПЭ обратно в НСП. Образование 11-цис-формы Хр родопсина беспозвоночных обеспечивается следующим: 1) транс-цис-фотоизомеризацией Хр в составе метародопсина (все беспозвоночные); 2) транс-цис-фотоизомеризацией Хр в дополнительном белке-катализаторе (ретинохром головоногих моллюсков; ретинальфотоизомераза насекомых, ракоскорпионовых) с последующим обменом Хр между метародопсином и белком-катализатором; 3) термальной изомеризацией полностью-транс-ретиниловых эфиров ненасыщенных жирных кислот с одновременным их превращением в 11-цис-ретинол (ракообразные) так, как это имеет место в ПЭ позвоночных. Приведенный материал обсуждается в плане сходств и отличий механизмов активации, деактивации и регенерации ЗП, а также путей изомеризации их Хр у некоторых представителей позвоночных и беспозвоночных животных

ГРНТИ	34.39.19

ВИНИТИ 341.39.19.09.11
Рубрики: СЕТЧАТКА
ЗРИТЕЛЬНЫЕ ПИГМЕНТЫ
РОДОПСИН
АКТИВАЦИЯ
РЕГЕНЕРАЦИЯ
ОБЗОРЫ
ПОЗВОНОЧНЫЕ
БЕСПОЗВОНОЧНЫЕ

РЖ ВИНИТИ 34 (BI47) 00.09-04И7.10

Шуколюков, С. А.
Ключевые реакции зрительного цикла позвоночных и беспозвоночных: активация и регенерация родопсина [Текст] / С. А. Шуколюков // Ж. эволюц. биохимии и физиол. - 1999. - Т. 35, N 6. - С. 441-452 . - ISSN 0044-4529
Аннотация: Обобщены и проанализированы данные литературы, затрагивающие механизмы активации (деактивации) и регенерации зрительных пигментов (ЗП) у позвоночных (млекопитающие) и беспозвоночных (головоногие моллюски, насекомые, ракообразные). Активационный путь ЗП включает в себя цис-транс-фотоизомеризацию хромофора (Хр) и взаимодействие активированного фотопродукта - метародопсина II (позвоночные) или метародопсина (беспозвоночные) с G-белком. Гашение активности метародопсина II у позвоночных (стадия дезактивации) обеспечивается до конца не расшифрованным взаимодействием метародопсина II с метародопсинкиназой, арестином, Ca{2+}, S-модулином, ретиноидоксидоредуктазой (РОР) и фосфатазой 2А. Активационный (деактивационный) путь родопсина насекомых имеет ряд отличительных особенностей: 1) метародопсин относительно стабилен, но может менять свою термостабильность и эффективность активации G-белка; 2) связывание арестина метародопсином предшествует фосфорилированию последнего метародопсинкиназой; 3) арестин контролирует как фосфорилирование, так и дефосфорилирование метародопсина. Регенерационный путь родопсина позвоночных представлен следующими термальными реакциями: дефосфорилированием метародопсина II фосфатазой 2А, восстановлением полностью-транс-ретиналя (т. е. all-trans-retinal) в полностью-транс-ретинол с помощью РОР, транспортом полностью-транс-ретинола в пигментный эпителий (ПЭ), его эстерификацией до полностью-транс-ретиниловых эфиров, превращением последних в 11-цис-ретинол, окислением 11-цис-ретинола в 11-цис-ретиналь и транспортом последнего из ПЭ обратно в НСП. Образование 11-цис-формы Хр родопсина беспозвоночных обеспечивается следующим: 1) транс-цис-фотоизомеризацией Хр в составе метародопсина (все беспозвоночные); 2) транс-цис-фотоизомеризацией Хр в дополнительном белке-катализаторе (ретинохром головоногих моллюсков; ретинальфотоизомераза насекомых, ракоскорпионовых) с последующим обменом Хр между метародопсином и белком-катализатором; 3) термальной изомеризацией полностью-транс-ретиниловых эфиров ненасыщенных жирных кислот с одновременным их превращением в 11-цис-ретинол (ракообразные) так, как это имеет место в ПЭ позвоночных. Приведенный материал обсуждается в плане сходств и отличий механизмов активации, деактивации и регенерации ЗП, а также путей изомеризации их Хр у некоторых представителей позвоночных и беспозвоночных животных

ГРНТИ	34.33.27

ВИНИТИ 341.33.27.15.27
Рубрики: СЕТЧАТКА
ЗРИТЕЛЬНЫЕ ПИГМЕНТЫ
РОДОПСИН
АКТИВАЦИЯ
РЕГЕНЕРАЦИЯ
ОБЗОРЫ
ПОЗВОНОЧНЫЕ
БЕСПОЗВОНОЧНЫЕ

РЖ ВИНИТИ 34 (BI17) 00.10-04И1.11

Шуколюков, С. А.
Ключевые реакции зрительного цикла позвоночных и беспозвоночных: активация и регенерация родопсина [Текст] / С. А. Шуколюков // Ж. эволюц. биохимии и физиол. - 1999. - Т. 35, N 6. - С. 441-452 . - ISSN 0044-4529
Аннотация: Обобщены и проанализированы данные литературы, затрагивающие механизмы активации (деактивации) и регенерации зрительных пигментов (ЗП) у позвоночных (млекопитающие) и беспозвоночных (головоногие моллюски, насекомые, ракообразные). Активационный путь ЗП включает в себя цис-транс-фотоизомеризацию хромофора (Хр) и взаимодействие активированного фотопродукта - метародопсина II (позвоночные) или метародопсина (беспозвоночные) с G-белком. Гашение активности метародопсина II у позвоночных (стадия дезактивации) обеспечивается до конца не расшифрованным взаимодействием метародопсина II с метародопсинкиназой, арестином, Ca{2+}, S-модулином, ретиноидоксидоредуктазой (РОР) и фосфатазой 2А. Активационный (деактивационный) путь родопсина насекомых имеет ряд отличительных особенностей: 1) метародопсин относительно стабилен, но может менять свою термостабильность и эффективность активации G-белка; 2) связывание арестина метародопсином предшествует фосфорилированию последнего метародопсинкиназой; 3) арестин контролирует как фосфорилирование, так и дефосфорилирование метародопсина. Регенерационный путь родопсина позвоночных представлен следующими термальными реакциями: дефосфорилированием метародопсина II фосфатазой 2А, восстановлением полностью-транс-ретиналя (т. е. all-trans-retinal) в полностью-транс-ретинол с помощью РОР, транспортом полностью-транс-ретинола в пигментный эпителий (ПЭ), его эстерификацией до полностью-транс-ретиниловых эфиров, превращением последних в 11-цис-ретинол, окислением 11-цис-ретинола в 11-цис-ретиналь и транспортом последнего из ПЭ обратно в НСП. Образование 11-цис-формы Хр родопсина беспозвоночных обеспечивается следующим: 1) транс-цис-фотоизомеризацией Хр в составе метародопсина (все беспозвоночные); 2) транс-цис-фотоизомеризацией Хр в дополнительном белке-катализаторе (ретинохром головоногих моллюсков; ретинальфотоизомераза насекомых, ракоскорпионовых) с последующим обменом Хр между метародопсином и белком-катализатором; 3) термальной изомеризацией полностью-транс-ретиниловых эфиров ненасыщенных жирных кислот с одновременным их превращением в 11-цис-ретинол (ракообразные) так, как это имеет место в ПЭ позвоночных. Приведенный материал обсуждается в плане сходств и отличий механизмов активации, деактивации и регенерации ЗП, а также путей изомеризации их Хр у некоторых представителей позвоночных и беспозвоночных животных

ГРНТИ	34.33.02

ВИНИТИ 341.33.02.29
Рубрики: СЕТЧАТКА
ЗРИТЕЛЬНЫЕ ПИГМЕНТЫ
РОДОПСИН
АКТИВАЦИЯ
РЕГЕНЕРАЦИЯ
ОБЗОРЫ
ПОЗВОНОЧНЫЕ
БЕСПОЗВОНОЧНЫЕ

РЖ ВИНИТИ 34 (BI20) 02.02-04И3.354

Шуколюков, С. А.
Американский таракан Periplaneta americana синтезирует каротиноиды из их предшественника - пирофосфата [{14}C]мевалоновой кислоты [Текст] / С. А. Шуколюков, В. С. Сааков // Биохимия. - 2001. - Т. 66, N 5. - С. 663-669 . - ISSN 0320-9725
Аннотация: Содержание основного каротиноида Periplaneta americana - 'бета'-каротина в кишечнике зависит от поступления этого вещества с пищей: каротиноид-избыточная диета приводит к его накоплению (до 'ЭКВИВ'10 мкг на 1 г влажной массы), тогда как при каротиноид-недостаточной диете содержание каротиноида в этой ткани низко ('ЭКВИВ'0,7 мкг на 1 г влажной массы), но реально определимо. В отличие от кишечника в глазу независимо от диеты поддерживается постоянная конц-ия 'бета'-каротина ('ЭКВИВ'1,3-1,4 мкг на 1 г влажной массы). Этот уровень не менялся по крайней мере у трех поколений животных, которые в течение трех лет содержались на каротиноид-недостаточной диете, что указывает на возможность образования каротиноидов самим животным в результате синтеза каротиноидов de novo. Введение внутрибрюшинно предшественника каротиноидов - пирофосфата [{14}C]мевалоновой кислоты (3,4 нмоля) приводило к цикличному увеличению содержания 'бета'-каротина в глазу на 2 и 4 день после введения. Очистка меченой фракции 'бета'-каротина из кишечника и глаза с помощью таких процедур, как перевод каротиноида в менее полярный растворитель, щелочной гидролиз (омыление) и хроматография, приводила к падению удельной радиоактивности препарата до постоянных величин, которые в дальнейшем не менялись при повторении хроматографии до 4 раз. Профиль элюции таких очищенных препаратов 'бета'-каротина характеризовался совпадением симметричных пиков поглощения и счета. Предполагается, что для создания оптимальной концентрации каротиноидов в глазу у P. americana имеются два биохимических механизма: накопление каротиноидов про запас при их избытке в пище и синтез этих веществ de novo при их отсутствии в диете. Россия, Ин-т эволюционной физиологии и биохимии РАН, Санкт-Петербург. Библ. 26

ГРНТИ	34.33.19

ВИНИТИ 341.33.19.45.15.35
Рубрики: КАРАТИНОИДЫ
БИОСИНТЕЗ
НАКОПЛЕНИЕ
ОЧИСТКА
МЕТОД
ГЛАЗ
PERIPLANETA AMERICANA

Доп.точки доступа:
Сааков, В.С.

РЖ ВИНИТИ 34 (BI20) 02.09-04И3.318

Шуколюков, С. А.
Каротиноиды глаза и кишечника американского таракана Periplaneta americana: состав, накопление, очистка, включение метки [Текст] / С. А. Шуколюков // Сенсор. системы. - 2001. - Т. 15, N 2. - С. 139-146 . - ISSN 0235-0092
Аннотация: Каротиноиды (К) кишечника американского таракана P. americana, содержащегося на каротиноид-избыточной диете (КИД), представлены 3 основными К: 'бета'-, 'альфа'- и 'дзета'-каротином ('ЭКВИВ'80, 15 и 5% соответственно). В глазу животных, содержащихся на КИД и К-недостаточной диете (КНД), а также в кишечнике животных, содержащихся на КНД, других К, кроме 'бета'-каротина, обнаружить не удалось. Содержание К в кишечнике зависит от поступления этих веществ с пищей: КИД приводит к их накоплению до 'ЭКВИВ'300 мкг/г влажного веса, тогда как при КНД содержание К в этой ткани низко (0,7'ЭКВИВ'3.0 мкг/г влажного веса), но реально определимо. Независимо от КИД или КНД местом накопления основных количеств К в кишечнике является его передний отдел (в основном зоб) и в меньшей степени - задний. В глазу в отличие от кишечника, независимо от диеты поддерживается постоянная концентрация 'бета'-каротина ('ЭКВИВ'1.3-1.4 мкг/г влажного веса). Этот уровень не менялся в течение 3 лет содержания животных на КНД, что указывает на возможность образования К de novo самим животным. Введением насекомым внутрибрюшинно предшественника синтеза К - пирофосфата [{14}C]мевалоновой кислоты в кол-ве 3.4 нмоля приводило к увеличению содержания 'бета'-каротина в глазу на 4-й день после введения, а также к включению метки во фракцию К. Последовательная очистка меченого 'бета'-каротина из кишечника и глаза с помощью перевода К в менее полярный растворитель, щелочного гидролиза (омыление) примесей, а также многократной хроматографии на колонке с окисью алюминия и целлюлозой приводила к падению удельной радиоактивности препарата до постоянных величин. Профиль элюции меченого 'бета'-каротина после колоночной хроматографии характеризовался совпадением симметричных пиков поглощения и счета. Предполагается, что для создания оптимальной концентрации К в глазу у P. americana имеется 2 биохимических механизма: накопление К в кишечнике в больших кол-вах про запас при их избытке в пище и синтез этих веществ de novo при их отсутствии в диете. Библ. 18

ГРНТИ	34.33.19

ВИНИТИ 341.33.19.45.15.55.25
Рубрики: PERIPLANETA AMERICANA (ORTH.)
ГЛАЗ
КИШЕЧНИК
КАРОТИНОИДЫ
'БЕТА'-КАРОТИН
КОЛОНОЧНАЯ ХРОМАТОГРАФИЯ
ПИРОФОСФАТ [{14}C]МЕВАЛОНОВОЙ КИСЛОТЫ

РЖ ВИНИТИ 34 (BI21) 02.09-04И2.271

Шуколюков, С. А.
Каротиноиды глаза и кишечника американского таракана Periplaneta americana: состав, накопление, очистка, включение метки [Текст] / С. А. Шуколюков // Сенсор. системы. - 2001. - Т. 15, N 2. - С. 139-146 . - ISSN 0235-0092
Аннотация: Каротиноиды (К) кишечника американского таракана P. americana, содержащегося на каротиноид-избыточной диете (КИД), представлены 3 основными К: 'бета'-, 'альфа'- и 'дзета'-каротином ('ЭКВИВ'80, 15 и 5% соответственно). В глазу животных, содержащихся на КИД и К-недостаточной диете (КНД), а также в кишечнике животных, содержащихся на КНД, других К, кроме 'бета'-каротина, обнаружить не удалось. Содержание К в кишечнике зависит от поступления этих веществ с пищей: КИД приводит к их накоплению до 'ЭКВИВ'300 мкг/г влажного веса, тогда как при КНД содержание К в этой ткани низко (0,7'ЭКВИВ'3.0 мкг/г влажного веса), но реально определимо. Независимо от КИД или КНД местом накопления основных количеств К в кишечнике является его передний отдел (в основном зоб) и в меньшей степени - задний. В глазу в отличие от кишечника, независимо от диеты поддерживается постоянная концентрация 'бета'-каротина ('ЭКВИВ'1.3-1.4 мкг/г влажного веса). Этот уровень не менялся в течение 3 лет содержания животных на КНД, что указывает на возможность образования К de novo самим животным. Введением насекомым внутрибрюшинно предшественника синтеза К - пирофосфата [{14}C]мевалоновой кислоты в кол-ве 3.4 нмоля приводило к увеличению содержания 'бета'-каротина в глазу на 4-й день после введения, а также к включению метки во фракцию К. Последовательная очистка меченого 'бета'-каротина из кишечника и глаза с помощью перевода К в менее полярный растворитель, щелочного гидролиза (омыление) примесей, а также многократной хроматографии на колонке с окисью алюминия и целлюлозой приводила к падению удельной радиоактивности препарата до постоянных величин. Профиль элюции меченого 'бета'-каротина после колоночной хроматографии характеризовался совпадением симметричных пиков поглощения и счета. Предполагается, что для создания оптимальной концентрации К в глазу у P. americana имеется 2 биохимических механизма: накопление К в кишечнике в больших кол-вах про запас при их избытке в пище и синтез этих веществ de novo при их отсутствии в диете. Библ. 18

ГРНТИ	34.33.23

ВИНИТИ 341.33.23.19.07.07.13
Рубрики: PERIPLANETA AMERICANA (ORTH.)
ГЛАЗ
КИШЕЧНИК
КАРОТИНОИДЫ
'БЕТА'-КАРОТИН
КОЛОНОЧНАЯ ХРОМАТОГРАФИЯ
ПИРОФОСФАТ [{14}C]МЕВАЛОНОВОЙ КИСЛОТЫ

10.

РЖ ВИНИТИ 34 (BI20) 03.03-04И3.376

Бобкова, М. В.
Особенности ультраструктуры глаза и зрительных пигментов белоглазого мутанта американского таракана, Periplaneta americana [Текст] / М. В. Бобкова, С. А. Шуколюков, М. Ярвилехто // Сенсор. системы. - 2002. - Т. 16, N 3. - С. 190-201 . - ISSN 0235-0092
Аннотация: Глаз мутанта имеет те же самые элементы диоптрического и световоспринимающего аппарата, а структура омматидия у животных дикого типа и белоглазых мутантов достаточно сходна. В то же время выявлены некоторые особенности ультраструктуры глаза мутантов. В фоторецепторах, а также в первичных и вторичных пигментных клетках обнаружены электронно-плотные (неокрашенные in vivo) и ограниченные мембраной гранулы, которые способны к радиальной миграции в ответ на изменение освещенности подобно оммохромным гранулам экранирующего пигмента омматидиев глаз дикого типа. Рабдомеры фоторецепторов белоглазых тараканов, по сравнению с таковыми дикого типа, выглядят несколько дезорганизованными, что проявляется в набухании микровилл фоторецепторов. И, наконец, у мутантов в состоянии темновой адаптации площадь поперечного сечения рабдома приблизительно в 3 раза меньше, чем у дикого при тех же световых условиях. Микроспектрофотометрия зрительного пигмента возможна только на омматидиях мутантов, поскольку эти структуры у животных дикого типа содержат экранирующий оммохромный пигмент, концентрация которого многократно превышает концентрацию зрительного пигмента. Скорректированные на светорассеяние усредненные спектры рабдомов мутантов, адаптированных к красному и синему свету, соответствуют двум фотопродуктам с пиком поглощения при 485 нм (предположительно родопсин) и 490 нм (предположительно метародопсин). Переход в метародопсин сопровождается небольшим сдвигом 'лямбда'[max] и увеличением амплитуды спектра. В результате вычитания спектров, измеренных в поляризованном свете при ориентации e-вектора параллельно и перпендикулярно осям микровилл, получены "чистые спектры" (без влияния светорассеяния) родопсина и метародопсина таракана. Коротковолновая часть этих спектров была несколько уже, чем у номограммных пигментов позвоночных, построенных с учетом вклада 'бета'-полосы. Отношение максимальных значений спектров поглощения пигмента, измеренных в поляризованном свете при двух ориентациях e-вектора (дихроизм) составляло около 3-4. Не выявлено различий в ультраструктуре и в содержании зрительного пигмента у животных, содержащихся на каротиноид(ретиноид)-избыточной или -недостаточной диетах. Библ. 9

ГРНТИ	34.33.19

ВИНИТИ 341.33.19.45.09.13.07.09
Рубрики: ЗРЕНИЕ
СЛОЖНЫЕ ГЛАЗА
УЛЬТРАСТРУКТУРА
ЗРИТЕЛЬНЫЕ ПИГМЕНТЫ
МУТАНТЫ
АМЕРИКАНСКИЙ ТАРАКАН

Доп.точки доступа:
Шуколюков, С.А.; Ярвилехто, М.

11.

РЖ ВИНИТИ 34 (BI24) 03.03-04М3.271

Бобкова, М. В.
Особенности ультраструктуры глаза и зрительных пигментов белоглазого мутанта американского таракана, Periplaneta americana [Текст] / М. В. Бобкова, С. А. Шуколюков, М. Ярвилехто // Сенсор. системы. - 2002. - Т. 16, N 3. - С. 190-201 . - ISSN 0235-0092
Аннотация: Глаз мутанта имеет те же самые элементы диоптрического и световоспринимающего аппарата, а структура омматидия у животных дикого типа и белоглазых мутантов достаточно сходна. В то же время выявлены некоторые особенности ультраструктуры глаза мутантов. В фоторецепторах, а также в первичных и вторичных пигментных клетках обнаружены электронно-плотные (неокрашенные in vivo) и ограниченные мембраной гранулы, которые способны к радиальной миграции в ответ на изменение освещенности подобно оммохромным гранулам экранирующего пигмента омматидиев глаз дикого типа. Рабдомеры фоторецепторов белоглазых тараканов, по сравнению с таковыми дикого типа, выглядят несколько дезорганизованными, что проявляется в набухании микровилл фоторецепторов. И, наконец, у мутантов в состоянии темновой адаптации площадь поперечного сечения рабдома приблизительно в 3 раза меньше, чем у дикого при тех же световых условиях. Микроспектрофотометрия зрительного пигмента возможна только на омматидиях мутантов, поскольку эти структуры у животных дикого типа содержат экранирующий оммохромный пигмент, концентрация которого многократно превышает концентрацию зрительного пигмента. Скорректированные на светорассеяние усредненные спектры рабдомов мутантов, адаптированных к красному и синему свету, соответствуют двум фотопродуктам с пиком поглощения при 485 нм (предположительно родопсин) и 490 нм (предположительно метародопсин). Переход в метародопсин сопровождается небольшим сдвигом 'лямбда'[max] и увеличением амплитуды спектра. В результате вычитания спектров, измеренных в поляризованном свете при ориентации e-вектора параллельно и перпендикулярно осям микровилл, получены "чистые спектры" (без влияния светорассеяния) родопсина и метародопсина таракана. Коротковолновая часть этих спектров была несколько уже, чем у номограммных пигментов позвоночных, построенных с учетом вклада 'бета'-полосы. Отношение максимальных значений спектров поглощения пигмента, измеренных в поляризованном свете при двух ориентациях e-вектора (дихроизм) составляло около 3-4. Не выявлено различий в ультраструктуре и в содержании зрительного пигмента у животных, содержащихся на каротиноид(ретиноид)-избыточной или -недостаточной диетах. Библ. 9

ГРНТИ	34.39.19

ВИНИТИ 341.39.19.09.11
Рубрики: ЗРЕНИЕ
СЛОЖНЫЕ ГЛАЗА
УЛЬТРАСТРУКТУРА
ЗРИТЕЛЬНЫЕ ПИГМЕНТЫ
МУТАНТЫ
АМЕРИКАНСКИЙ ТАРАКАН

Доп.точки доступа:
Шуколюков, С.А.; Ярвилехто, М.

12.

РЖ ВИНИТИ 34 (BI24) 04.06-04М3.277

Шуколюков, С. А.
Спектральные свойства рабдомов и темновой распад метародопсина у белоглазой дрозофилы (Drosophila melanogaster) [Текст] / С. А. Шуколюков, В. И. Говардовский // Сенсор. системы. - 2003. - Т. 17, N 2. - С. 124-133 . - ISSN 0235-0092
Аннотация: При помощи микроспектрофотометра с высокой скоростью сканирования изучены спектры поглощения рабдомов Drosophila, которые были выращены на каротиноид-избыточной и каротиноид-недостаточной диетах и имели соответственно высокий и низкий уровень родопсина (Rh{+}- и Rh{-}-Drosophila). Скорректированный на светорассеяние спектр поглощения адаптированного к красному свету рабдома Rh{+}-Drosophila имеет выраженную полосу поглощения с 'лямбда'[max] 470-480 нм (родопсин), пик при 412 нм (неидентифицированный пигмент) и два УФ пика при 352 и 372 нм (предположительно пигмент-сенсибилизатор). Адаптация к синему свету приводит к исчезновению полосы поглощения родопсина и появлению полосы поглощения с 'лямбда'[max] около 570 нм (метародопсин). Спектр поглощения рабдома Rh{-}-Drosophila при любой адаптации не имеет полос поглощения родопсина, метародопсина и пигмента-сенсибилизатора, но содержит неидентифицированный пик при 412 нм. Дифференциальные спектры поглощения родопсина и метародопсина у Rh{+}-Drosophila удовлетворительно аппроксимируются номограммными пигментами с 'лямбда'[max]=477 и 571 нм, построенными для зрительных пигментов позвоночных. После адаптации к синему свету в рабдоме Rh{+}-Drosophila выявляются две фракции метародопсина - нестабильная и стабильная. Нестабильная фракция, составляющая около 80%, подобно метародопсину II позвоночных распадается в темноте с постоянной времени 'ПРИБЛ='2 мин. Оставшаяся стабильная фракция спектрально не отличается от исходного метародопсина и может быть переведена обратно в родопсин освещением длинноволновым светом. В отличие от метародопсина II позвоночных, распад нестабильной фракции метародопсина Drosophila не сопровождается спектрально выявляемым освобождением ретиналя или образованием ретиналь-оксима в присутствии экзогенного гидроксиламина. Однако гидроксиламин, добавленный к препарату, вызывает распад стабильной формы метародопсина. У Rh{+}-Drosophila, выращенных при синем свете, практически весь метародопсин находится в стабильной форме, которая затем в препаратах in vitro может быть многократно конвертирована в родопсин и обратно. Россия, Ин-т эволюц. физиологии и биохимии РАН, Санкт-Петербург. Библ. 24

ГРНТИ	34.39.19

ВИНИТИ 341.39.19.09.11
Рубрики: РАБДОМЫ
СПЕКТРАЛЬНЫЕ СВОЙСТВА
МЕТАРОДОПСИН
ТЕМНОВОЙ РАСПАД
ДРОЗОФИЛА

Доп.точки доступа:
Говардовский, В.И.

13.

РЖ ВИНИТИ 34 (BI24) 05.04-04М3.167

Цикл зрительного пигмента и темновая адаптация: новые подходы к исследованию [Текст] / В. И. Говардовский [и др.] // Рос. физиол. ж. - 2004. - Т. 90, N 8. - С. 1015-1025 . - ISSN 0869-8139
Аннотация: Зрительный цикл фоторецепторов сетчатки позвоночных представляет собой последовательность реакций, обеспечивающих регенерацию зрительного пигмента после его фотолиза. Наследственные и приобретенные дефекты зрительного цикла приводят к нарушению темновой адаптации и являются причиной многих заболеваний сетчатки. В работе описывается новый подход к исследованию реакций зрительного цикла с использованием скоростной поляризационной микроспектрофотометрии. Этот метод позволяет получить данные о взаимопревращениях продуктов фотолиза зрительного пигмента в одиночных интактных фоторецепторах в условиях, соответствующих ситуации in vivo. При помощи этого подхода получена полная схема переходов между метародопсинами, ретиналем и ретинолом в палочках, и показано, что распад метародопсинов определяет как временной ход темновой адаптации при малых уровнях обесцвечивания, так и возникновение ретинола, служащего субстратом для регенерации родопсина. Впервые получены данные о кинетике распада метапродуктов в колбочках, которая оказалась на порядок быстрее, чем в палочках. Обсуждаются перспективы дальнейшего применения метода для анализа зрительного цикла в норме и патологии. Россия, Ин-т эволюционной физиол. и биохим. РАН, Санкт-Петербург. Библ. 28

ГРНТИ	34.39.19

ВИНИТИ 341.39.19.09.11
Рубрики: ЗРИТЕЛЬНЫЙ ПИГМЕНТ
ЦИКЛ
ТЕМНОВАЯ АДАПТАЦИЯ
ФОТОРЕЦЕПТОРЫ
СЕТЧАТКА
ПОЗВОНОЧНЫЕ

Доп.точки доступа:
Говардовский, В.И.; Шуколюков, С.А.; Колесников, А.В.; Голобокова, Е.Ю.

14.

РЖ ВИНИТИ 34 (BI49) 11.08-04М1.26

Шуколюков, С. А.
Нативный электрофорез в протеомике клетки: BN- и CN-PAGE [Текст] / С. А. Шуколюков // Цитология. - 2011. - Т. 53, N 2. - С. 159-165 . - ISSN 0041-3771
Аннотация: Целью представленного мини-обзора является привлечение внимания отечественного читателя к быстрому, дешевому и легко воспроизводимому методу нативного электрофореза в полиакриламидном геле (PAGE), который по непонятным причинам до сих пор не применяется в нашей стране. В обзоре приведены наиболее интересные примеры использования трех типов нативного электрофореза - "голубого нативного" (BN-PAGE), "неокрашенного нативного" (СN-PAGE) и "неокрашенного нативного высокого разрешения" (hrCN-PAGE) для изучения особенностей протемов клеток животных, растений и бактерий. Приведены ссылки на фундаментальные обзоры, основные протоколы, модификации исходных методов и на примеры комбинации нативного электрофореза с другими физическими или химическими методами. Особое внимание уделено принципам BN-, CN- и hrCN-PAGE и преимуществам и недостаткам этих методов. Россия, Ин-т эволюционной физиологии и биохимии им. И.М. Сеченова РАН, Санкт-Петербург

ГРНТИ	34.19.05

ВИНИТИ 341.19.05.99
Рубрики: БЕЛКИ
ЭЛЕКТРОФОРЕЗ
ПРОТЕОМИКА
ОБЗОРЫ

15.

РЖ ВИНИТИ 34 (BI12) 91.03-04Б2.117

Шуколюков, С. А.
Фототрансдукция у одноклеточных и беспозвоночных: состояние проблемы [Текст] / С. А. Шуколюков // Ж. эволюц. биохимии и физиол. - 1990. - Т. 26, N 4. - С. 557-573 . - ISSN 0044-4529

ГРНТИ	34.27.17

ВИНИТИ 341.27.17.09.07.09.29
Рубрики: ГАЛОФИЛЬНЫЕ БАКТЕРИИ
HALOBACTERIUM HALOBIUM (BACT.)
ФОТОРЕЦЕПЦИЯ
ФОТОТРАНСДУКЦИЯ
ФОТОЦИКЛ
БЕЛКИ
РЕГУЛЯТОРНЫЕ БЕЛКИ
БАКТЕРИОРОДОПСИН
ОБЗОРЫ
БИБЛ. 106

16.

РЖ ВИНИТИ 34 (BI50) 94.06-04И3.322

Ланда, С. Б.
Анализ механизмов световой коммуникации светляков Luciola mingrelica (Coleoptera, Lampyridae). 2. Модификация спектральной чувствительности глаза [Текст] / С. Б. Ланда, Ф. Г. Грибакин, С. А. Шуколюков // Сенсор. системы. - 1994. - Т. 8, N 1. - С. 15-19 . - ISSN 0235-0092
Аннотация: Рассмотрена роль спектрального состава биолюминесценции светляков Luciola mingrelica и спектральной чувствительности сложного глаза этих насекомых в процессе световой коммуникации. Измерены спектры биолюминесценции, кривые спектральной чувствительности глаза и спектры поглощения экранирующих пигментов, выделенных из глаз этих насекомых. Показано, что кривая спектральной чувствительности глаза совпадает со спектром биолюминесценции. Основным зрительным пигментом у этих насекомых является, вероятно, родопсин Р 550, а модификация кривой спектральной чувствительности глаза осуществляется, по-видимому, за счет поглощения света каротиноидами. Исходя из полученных данных, построена теоретическая кривая спектральной чувствительности глаза, с которой с вероятностью не менее 95% совпадают экспериментальные данные. Обсуждаются возможные механизмы выделения коммуникативного сигнала данными насекомыми по спектру биолюминесценции из общего светового фона уже на самом раннем уровне его восприятия.

ГРНТИ	34.33.19

ВИНИТИ 341.33.19.45.09.13.07.09
Рубрики: КОММУНИКАЦИИ ЗРИТЕЛЬНЫЕ
СВЕЧЕНИЕ НАСЕКОМЫХ
МЕХАНИЗМ
ЗРЕНИЕ
СЛОЖНЫЕ ГЛАЗА
СПЕКТРАЛЬНАЯ ЧУВСТВИТЕЛЬНОСТЬ
LUCIOLA MINGRELICA (COL.)
НАСЕКОМЫЕ

Доп.точки доступа:
Грибакин, Ф.Г.; Шуколюков, С.А.

"Электронные каталоги и базы данных библиотек СО РАН"

© Международная Ассоциация пользователей и разработчиков электронных библиотек и новых информационных технологий
(Ассоциация ЭБНИТ)

rtvarBDview(" результаты поиска","20190607010228","4682442");

Вид поиска